Айтач окрашивание — 96 фото
AIRTOUCH техника балаяж
Окрашивание волос бейби дол
АИР тач на отросшие корни
Шатуш и балаяж на темные длинные волосы
Балаяж на темные волосы до после
Шатуш балаяж на темные волосы
Светлый балаяж на темные волосы
Балаяж блонд 2020
Окрашивание волос до и после
Балаяж Миллер
AIRTOUCH жемчужный блонд
Колорирование седых волос
Стрижка до и после женская
Окрашивание омбре балаяж
Шатуш на русые волосы до и после
Омбре на русые волосы длинные
Балаяж темный пепел
Перри Эдвардс макияж
Контуринг балаяж блонд
Техника Эйр тач
Окрашивание балаяж блонд на средние 2022
Окрашивание волос балаяж шатуш
Техника мелирования AIRTOUCH
Балаяж колорирование + тонирование
АИР тач 2021
Техника окрашивания AIRTOUCH
Техника осветления волос
Аиртач окрашивание блонд
Техника айр тач
Техника покраски АИР тач
Техника Air tach на темные волосы
Шатуш балаяж 2021
Техника балаяж на темные длинные волосы
Контуринг балаяж блонд
Амбре окрашивание волос для брюнеток
Рельефный блонд окрашивание
Стилист Джек Мартин
Балаяж блондирование каре
Пепельный балаяж 2020
Эйр тач на русые
Блонд с отросшими корнями
Пепельный балаяж 2020
Блонд шатуш балаяж
АИР тач 2020 растяжка
Стрижка до и после женская
Техника Air tach
Мелирование жемчужный блонд
Пепельный миллиривинь
Нейтральный блонд
Окрашивание на длинные прямые волосы
Стрижка до и после женская
Окрашивание волос 2021 балаяж на темные
Балаяж в медовых оттенках
Красивое окрашивание на светлые длинные волосы
Шатуш балаяж омбре на прямые волосы
Балаяж блонд каре
Окрашивание балаяж бло
Окрашивание из темного в светлый
Блонд балаяж Боб
Шатуш балаяж на темные волосы
Мелирование балаяж каре русые
Омбре балаяж шатуш мелирование
Окрашивание для блондинок
Прикорневой айртач
Прически на пепельные волосы
АИР тач окрашивание для седых волос
Блонд улица
Красивое омбре на волосах
Шатуш балаяж омбре на прямые волосы
Сомбре окрашивания волос темных
Окрашивание волос блонд
Балаяж шатуш и AIRTOUCH
Омбре и балаяж на темные длинные волосы
Техника окрашиыания айр тач
Техника балаяж на темные прямые волосы
Техника АИР тач блонд
Мелирование на длинные прямые волосы
Ужасное окрашивание волос
Айр тач на темные корни
Брюнетки с русыми волосами
Пепельный балаяж на каре
Шатуш балаяж блонд каре
Техника мелирования балаяж
Балаяж серебристый блонд
Техника AIRTOUCH пепельный
Окрашивание Эйр тач на темные волосы
Тонирование темных волос в светлый
Мелирование шатуш балаяж
Шатуш из темного в светлый
AIRTOUCH Сарбашев
АИР тач техника окрашивания
АИР тач на темное каре
Айр тач
Пепельное омбре на каре
Техника окрашивания шатуш балаяж
Омбре на волосах
Айтач окрашивание волос — 92 фото
Сложное окрашивание
Окрашивания балаяж техника балаяж
Ужасное окрашивание волос
Рельефное окрашивание волос
Окрашенные волосы
Окрашивание shatush/Balayage/AIRTOUCH
Балаяж АИР тач
Техника AIRTOUCH 2020
Шатуш светлый на темные
Шатуш на осветленные волосы
Шатуш растяжка на темные волосы
Растяжка окрашивание волос
Сложное окрашивание волос
Омбре балаяж на светлые волосы прямые
Мелирование AIRTOUCH на темные
Сложное окрашивание
Valua Vitaly модели
Балаяж платиновый блонд
Мажиконтраст мелирование
Техника покраски АИР тач
Окрашивание волос шатуш холодные оттенки
Техника мелирования AIRTOUCH
Шатуш балаяж блонд каре
Балаяж Эстель
Самостоятельное окрашивание волос
АИР тач пепельный седой
Шатуш балаяж с тонированием
Эйр тач техника окрашивания
Шатуш балаяж холодные оттенки
Окрашивание седых волос балаяж
Мелирование балаяж
АИР тач пепельный
Окрашивание на длинные прямые волосы
Модель Локоны София Журавец
Окрашивание на русый 2022 балаяж
Балаяж колорирование + тонирование
Красивые волосы реклама
Балаяж на отросшие корни
Девушка с яркими волосами
Технология окрашивания шатуш
АИР тач техника окрашивания
Яркие волосы
Окрашивание зигзаг
Парикмахер окрашивание
Карамельный балаяж на прямые волосы
Кэти Перри с розовыми волосами
Окрашивание волос балаяж омбре техника
Валентина Миллер окрашивание
Мелирование с тонированием пепельных оттенков
Парикмахер окрашивание
АИР-тач окрашивание блонд
Блонд с отросшими корнями
Шатуш и контуринг на русые волосы
Разноцветные пряди
Окрашивание балаяж на русые средние волосы
Окрашивание волос стилист
AIRTOUCH окрашивание
Мелирование широкими прядями
Вуальное мелирование
Шатуш балаяж пепельный
Техника шатуш блонд
Балаяж шампань
Техника АИР тач
Окрашивание волос AIRTOUCH
Красивые яркие волосы
АИР тач окрашивание
AIRTOUCH жемчужный блонд
Окрашивания балаяж техника балаяж
Балаяж омбре шатуш
Девушка из салона красоты
Шатуш балаяж на темные волосы
Мелирование шатуш
Балаяж с темными корнями
Лонг Хэир
Крашеные пряди
Карамельный блонд балаяж
Окрашивание волос из темного в светлый
Американское окрашивание
Эйр тач техника окрашивания
Баннер лореаль профессионель
Техника АИР тач для волос
Парикмахер красит волосы
Мелирование с окрашиванием корней
Шатуш на русые волосы
Русые волосы с белыми кончиками
Окрашивание волос
Мелирование волос вуаль
Волосы фон
Осветленные пряди
Балаяж шатуш омбре растяжка
Содействие регенерации эндогенного суставного хряща с использованием каркасов внеклеточного матрикса
1.
Brittberg M. Клиническое восстановление суставного хряща — современный обзор. Анналы Джойнта. 2018;3 [Google Scholar]
2. Смит Г.Д., Кнутсен Г., Ричардсон Дж.Б. Клинический обзор методов восстановления хряща. J Bone Joint Surg Br. 2005;87(4):445–449. [PubMed] [Google Scholar]
3. Lories R.J., Luyten F.P. Костно-хрящевой комплекс при остеоартрозе. Нац. Преподобный Ревматол. 2011;7(1):43–49.. [PubMed] [Google Scholar]
4. Mankin H.J. Реакция суставного хряща на травму и остеоартрит (вторая из двух частей) N. Engl. Дж. Мед. 1974;291(25):1335–1340. [PubMed] [Google Scholar]
5. Hunter D.J., Bierma-Zeinstra S. Остеоартрит. Ланцет. 2019;393(10182):1745–1759. [PubMed] [Google Scholar]
6. Сэлмон Дж. Х., Рэт А. С., Селлам Дж., Мишель М., Эшард Дж. П., Гийемин Ф., Джолли Д., Фотрел Б. Экономические последствия остеоартрита нижних конечностей во всем мире: систематический обзор исследований стоимости болезни. Хрящевой остеоартрит. 2016;24(9): 1500–1508. [PubMed] [Google Scholar]
7.
Вульф А.Д., Пфлегер Б. Бремя основных заболеваний опорно-двигательного аппарата. Бык. Всемирный орган здравоохранения. 2003;81(9):646–656. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
8. Spahn G., Hofmann G.O. [Очаговые дефекты хряща в медиальном отделе колена. предикторы прогрессирования остеоартроза] Z. für Orthop. Unfallchirurgie. 2014;152(5):480–488. [PubMed] [Google Scholar]
9. Makris E.A., Gomoll A.H., Malizos K.N., Hu J.C., Athanasiou K.A. Методы репарации и тканевой инженерии суставного хряща. Нац. Преподобный Ревматол. 2015;11(1):21–34. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
10. Стедман Дж.Р., Родки В.Г., Бриггс К.К., Родриго Дж.Дж. [Техника микропереломов при лечении полных дефектов хряща в коленном суставе] Orthopä 1999;28(1):26–32. [PubMed] [Google Scholar]
11. Пестка Дж.М., Боде Г., Зальцманн Г., Судкамп Н.П., Нимейер П. Клинические результаты имплантации аутологичных хондроцитов при неудачном лечении микропереломов полнослойных дефектов хряща коленного сустава.
Являюсь. Дж. Спорт Мед. 2012;40(2):325–331. [PubMed] [Академия Google]
12. Деманж М.К., Минас Т., Гомолл А.Х. Спрингер; 2014. Имплантация аутологичных хондроцитов после предыдущего лечения методами стимуляции костного мозга, разработка идей в области восстановления хряща; стр. 213–225. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
13. Everhart JS, Jiang E.X., Poland S.G., Du A., Flanigan D.C. Неудачи, повторные операции и улучшение симптомов коленного сустава после трансплантации аутологичных хондроцитов с помощью матрицы. Метаанализ проспективных сравнительных исследований, Хрящ. 2019[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
14. Na Y., Shi Y., Liu W., Jia Y., Kong L., Zhang T., Han C., Ren Y. Имплантация аутологичные хондроциты превосходят микропереломы при дефектах суставно-хрящевой ткани коленного сустава? Систематический обзор данных 5-летнего наблюдения. Междунар. Дж. Сур. 2019;68:56–62. [PubMed] [Google Scholar]
15. Behrens P., Bitter T.
, Kurz B., Russlies M. Трансплантация/имплантация аутологичных хондроцитов, ассоциированных с матриксом (MACT/MACI) – 5-летнее наблюдение. Колено. 2006;13(3):194–202. [PubMed] [Google Scholar]
16. Керубино П., Грасси Ф., Булгерони П., M.J.J.o.O.S. Ронга Имплантация аутологичных хондроцитов с использованием двухслойной коллагеновой мембраны. предварительный отчет. 2003;11(1):10–15. [PubMed] [Google Scholar]
17. Дрисколл Д., Фарниа С., Кефалас П., Мазиарз Р.Т. Краткий обзор: высокая стоимость высокотехнологичной медицины: заблаговременное планирование выхода на рынок. Стволовые клетки Transl Med. 2017;6(8):1723–1729. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
18. Familiari F., Cinque M.E., Chahla J., Godin J.A., Olesen M.L., Moatshe G., LaPrade R.F. Клинические исходы и частота неудач костно-хрящевой аллотрансплантации коленного сустава: систематический обзор. Являюсь. Дж. Спорт Мед. 2018;46(14):3541–3549. [PubMed] [Google Scholar]
19. Аае Т.Ф., Рандсборг П.
-Х., Лурос Х., Ароен А., Лиан О.Б. Микропереломы более рентабельны, чем имплантация аутологичных хондроцитов: обзор исследований уровня 1 и уровня 2 с последующим 5-летним наблюдением. Колено Хирург. Спортивный травматол. Артроск. 2018;26(4):1044–1052. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
20. Kraeutler M.J., Belk J.W., Purcell J.M., McCarty E.C. Микропереломы по сравнению с имплантацией аутологичных хондроцитов при поражениях суставного хряща в коленном суставе: систематический обзор 5-летних результатов. Являюсь. Дж. Спорт Мед. 2018;46(4):995–999. [PubMed] [Google Scholar]
21. Мартин А.Р., Патель Дж.М., Злотник Х.М., Кэри Дж.Л., Маук Р.Л. Новые методы лечения регенерации хряща в исключенных в настоящее время популяциях «красного колена». NPJ Регенеративная медицина. 2019;4(1):1–11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
22. Zhang Y., He Y., Bharadwaj S., Hammam N., Carnagey K., Myers R., Atala A., Van Dyke M. Tissue- специфические покрытия внеклеточного матрикса для стимулирования клеточной пролиферации и поддержания клеточного фенотипа.
Биоматериалы. 2009 г.;30(23–24):4021–4028. [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
23. Бадылак С.Ф. Внеклеточный матрикс как материал биологического каркаса. Биоматериалы. 2007;28(25):3587–3593. [PubMed] [Google Scholar]
24. Huang B.J., Hu J.C., Athanasiou K.A. Стратегии тканевой инженерии на основе клеток, используемые при клиническом восстановлении суставного хряща. Биоматериалы. 2016; 98:1–22. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
25. Tamaddon M., Burrows M., Ferreira S.A., Dazzi F., Apperley J.F., Bradshaw A., Brand DD, Czernuszka J., Gentleman E. Monomeric, пористые каркасы из коллагена II типа способствуют хондрогенной дифференцировке мезенхимальных стволовых клеток костного мозга человека in vitro. науч. Отчет 2017; 7 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
26. Yang K., Sun J., Wei D., Yuan L., Yang J., Guo L., Fan H., Zhang X. Фотосшитый монокомпонентный гидрогель коллагена типа II в качестве матрицы для индукции хондрогенная дифференцировка мезенхимальных стволовых клеток костного мозга.
Дж. Матер. хим. Б. 2017;5(44):8707–8718. [PubMed] [Google Scholar]
27. Sutherland A.J., Converse G.L., Hopkins R.A., Detamore M.S. Биоактивность внеклеточного матрикса хряща в регенерации суставного хряща. Adv Healthc Mater. 2015;4(1):29–39. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
28. Броу Д.К., Махон О.Р., Диаз-Пайно П.Дж., Кэссиди Н., Дудурич И., Данн А., Бакли С.Т., Келли Д.Дж. Сшивание растворимого внеклеточного матрикса глиоксалем для получения высокопористых, эластичных и хондро-пермиссивных каркасов для ортопедической тканевой инженерии. Дж. Биомед. Матер. Рез. 2019;107(10):2222–2234. [PubMed] [Google Scholar]
, О’Брайен Ф.Дж., Брама П.Э.Дж., Келли Д.Дж. Тканеспецифические каркасы внеклеточного матрикса для регенерации пространственно сложных скелетно-мышечных тканей. Биоматериалы. 2019;188:63–73. [PubMed] [Google Scholar]
30. Ян К., Пэн Дж., Го К., Хуан Дж., Чжан Л., Яо Дж., Ян Ф., Ван С., Сюй В., Ван А. , Лу С. Трехмерный пористый бесклеточный матричный каркас из хряща, полученный из ВКМ, для инженерии хрящевой ткани in vivo с использованием хондрогенных стволовых клеток, полученных из костного мозга, меченных РХ36.
Биоматериалы. 2008;29(15):2378–2387. [PubMed] [Google Scholar]
31. Zhang Y., Liu S., Guo W., Wang M., Hao C., Gao S., Zhang X., Li X., Chen M., Jing X. , Wang Z., Peng J., Lu S., Guo Q. Пуповина человека Мезенхимальные стволовые клетки Wharton’s желе в сочетании с каркасом внеклеточного матрикса бесклеточного хряща улучшают восстановление хряща по сравнению с микропереломами в модели коз. Хрящевой остеоартрит. 2018;26(7):954–965. [PubMed] [Google Scholar]
32. Диас-Пайно П.Дж., Броу Д.К., Каннифф Г.М., Келли Д.Дж.Дж.Б., Communications B.R. 2020. Идентификация белков суставного хряща и пластины роста, специфичных для внеклеточного матрикса, поддерживающих либо остеогенез, либо стабильный хондрогенез стволовых клеток. [PubMed] [Google Scholar]
33. Hjelle K., Solheim E., Strand T., Muri R., Brittberg M. Дефекты суставного хряща в 1000 артроскопий коленного сустава. Артроскопия. 2002;18(7):730–734. [PubMed] [Академия Google]
34. Bekkers J.E., Tsuchida A.I.
, Malda J., Creemers L.B., Castelein R.J., Saris D.B., Dhert W.J. Качество фиксации каркаса в модели колена трупа человека. Хрящевой остеоартрит. 2010;18(2):266–272. [PubMed] [Google Scholar]
35. Дробник М., Радосавлевич Д., Равник Д., Павловчич В., Хриберник М. Сравнение четырех техник фиксации коллагенового каркаса в трупном колене человека. Хрящевой остеоартрит. 2006;14(4):337–344. [PubMed] [Академия Google]
36. Патель Дж. М., Сеннетт М. Л., Мартин А. Р., Салех К. С., Эби М. Р., Эшли Б. С., Миллер Л. М., Додж Г. Р., Бердик Дж. А., Кэри Дж. Л. Резорбируемые штифты для улучшения удержания каркаса в модели дефекта хряща свиньи. Хрящ. 2021; 13 (2_suppl): 1676S–1687S. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
37. Манчини И.А.Д., Виндас Боланьос Р.А., Броммер Х., Кастильо М., Рибейро А., ван Лун Дж.П.А.М., Менсинга А., ван Райен М.Х.П., Мальда Дж. , van Weeren R. Фиксация гидрогелевых конструкций для восстановления хряща на лошадиной модели: сложная проблема тканевой инженерии.
Часть С, Методы. 2017;23(11):804–814. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
38. Дейл З., Миксик И., Экхардт А. Препаративные процедуры и оценка чистоты белков коллагена. J. Хроматогр., B: Анал. Технол. Биомед. Жизнь наук. 2003; 790(1–2):245–275. [PubMed] [Google Scholar]
39. Фриман Ф.Э., Броу Д.К., Налти Дж., Фон Эйв С., Грейсон В.Л., Келли Д.Дж. Биоизготовление многомасштабных каркасов костного внеклеточного матрикса для инженерии костной ткани. Евро. Клетка. Матер. 2019; 38: 168–187. [PubMed] [Google Scholar]
40. Джонстон Б., Геринг Т.М., Каплан А.И., Голдберг В.М., Ю Дж.У. Хондрогенез мезенхимальных клеток-предшественников костного мозга in vitro. Эксп. Сотовый рез. 1998;238(1):265–272. [PubMed] [Google Scholar]
41. Browe D.C., Coleman C.M., Barry F.P., Elliman S.J. Гипоксия активирует путь PTHrP-MEF2C, чтобы ослабить гипертрофию в хряще, полученном из мезенхимальных стволовых клеток. науч. Отчет 2019; 9 (1): 1–12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
42.
Алмейда Х.В., Малхолл К.Дж., О’Брайен Ф.Дж., Келли Д.Дж. Стволовые клетки демонстрируют зависимый от донора ответ на возрастающие уровни высвобождения фактора роста из каркасов, полученных из внеклеточного матрикса. J Tissue Eng Regen Med. 2017;11(11):2979–2987. [PubMed] [Google Scholar]
43. Шихи Э.Дж., Месаллати Т., Винарделл Т., Келли Д.Дж. Инженерный хрящ или эндохондральная кость: сравнение различных природных гидрогелей. Акта Биоматер. 2015;13:245–253. [PubMed] [Google Scholar]
44. Mainil-Varlet P., Van Damme B., Nesic D., Knutsen G., Kandel R., Roberts S. Новая система оценки гистологии для оценки качества человеческого восстановление хряща: ICRS II. Являюсь. Дж. Спорт Мед. 2010;38(5):880–890. [PubMed] [Академия Google]
45. Резников Н., Алмани-Магал Р., Шахар Р., Вайнер С. Трехмерное изображение организации коллагеновых фибрилл в периферической пластинчатой кости крысы с использованием двухлучевого электронного микроскопа выявляет упорядоченные и неупорядоченные субламеллярные структуры.
Кость. 2013;52(2):676–683. [PubMed] [Google Scholar]
46. Levingstone T.J., Ramesh A., Brady R.T., Brama P.A.J., Kearney C., Gleeson J.P., O’Brien F.J. Бесклеточные многослойные каркасы на основе коллагена демонстрируют послойно специфичную регенерацию функциональная костно-хрящевая ткань в суставах коз. Биоматериалы. 2016;87:69–81. [PubMed] [Google Scholar]
47. Getgood A.M., Kew S.J., Brooks R., Aberman H., Simon T., Lynn A.K., N.J.T.K. Rushton Оценка восстановления костно-хрящевого дефекта на ранней стадии с использованием двухфазного каркаса на основе коллагена. биополимер гликозаминогликанов в модели коз. 2012;19(4):422–430. [PubMed] [Google Scholar]
48. Тан Ю., У С., Лэй В., Пан Л., Ван С., Ши З., Чжао Л., Наги Т.Р., Пэн С., Ху Дж., Feng X., Van Hul W., Wan M., Cao X. Индуцированная TGF-бета1 миграция костных мезенхимальных стволовых клеток сочетает резорбцию кости с формированием. Нац. Мед. 2009 г.;15(7):757–765. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
49.
Мендельсон А., Фрэнк Э., Оллред К., Джонс Э., Чен М., Чжао В., Мао Дж.Дж. Хондрогенез путем хемотаксического самонаведения синовиальной оболочки, костного мозга и жировых стволовых клеток in vitro. Фасеб. Дж. 2011;25(10):3496–3504. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
50. Дэн М., Мэй Т., Хоу Т., Луо К., Луо Ф., Ян А., Ю Б., Пан Х., Донг С. ., Xu J. TGFbeta3 рекрутирует эндогенные мезенхимальные стволовые клетки, чтобы инициировать регенерацию кости. Стволовые клетки Res. тер. 2017;8(1):258. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] Отозвано
51. Ли Ч.Х., Кук Дж.Л., Мендельсон А., Мойоли Э.К., Яо Х., Мао Дж.Дж. Регенерация суставной поверхности синовиального сустава кролика путем самонаведения клеток: исследование, подтверждающее концепцию. Ланцет. 2010;376(9739):440–448. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
52. Crawford D.C., DeBerardino TM, Williams R.J., 3rd NeoCart, имплантат аутологичной хрящевой ткани, по сравнению с микропереломами для лечения поражений дистального отдела бедренного хряща: фаза II FDA проспективное рандомизированное клиническое исследование через два года.
J Bone Joint Surg Am. 2012;94(11):979–989. [PubMed] [Google Scholar]
53. Zak L., Albrecht C., Wondrasch B., Widhalm H., Vekszler G., Trattnig S., Marlovits S., Aldrian S. Результаты через 2 года после матрикс-ассоциированного аутологичного трансплантация хондроцитов с использованием каркаса Novocart 3D: анализ клинических и рентгенологических данных. Являюсь. Дж. Спорт Мед. 2014;42(7):1618–1627. [PubMed] [Google Scholar]
54. Д’Амбрози Р., Валли Ф., Де Лука П., Урсино Н., Усуэлли Ф.Г. Костно-хрящевой заменитель MaioRegen для лечения дефектов коленного сустава: систематический обзор литературы. Дж. Клин. Мед. 2019;8(6):783. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
55. Schneider U., Rackwitz L., Andereya S., Siebenlist S., Fensky F., Reichert J., Loer I., Barthel T., Rudert M. ., Noth U. Проспективное многоцентровое исследование результатов имплантации аутологичных хондроцитов (CaReS) на основе гидрогеля коллагена I типа для восстановления дефектов суставного хряща в колене.
Являюсь. Дж. Спорт Мед. 2011;39(12):2558–2565. [PubMed] [Google Scholar]
56. Luo Y., Sinkeviciute D., He Y., Karsdal M., Henrotin Y., Mobasheri A., Onnerfjord P., Bay-Jensen A. Минорные коллагены в суставном хряще . Белковая клетка. 2017;8(8):560–572. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
57. Махон О.Р., Броу Д.К., Диас-Пайно П.Дж., Питакко П., Каннингем К.Т., Миллс К.Х.Г., Данн А., Келли Д.Дж. Каркасы внеклеточного матрикса, полученные из различных скелетно-мышечных тканей, управляют различными фенотипами макрофагов и направляют тканеспецифическую клеточную дифференцировку. Журнал иммунологии и регенеративной медицины. 2021;12 [Google Scholar]
58. Юн Д.С., Ли К.М., Ким С.Х., Ким С.Х., Чон Ю., Ким С.Х., Пак К.Х., Чхве Ю., Рю Х.А., Чой В.Дж., Ли Дж.В. Синергическое действие IL-8 и костного мозга концентрируется на регенерации хряща за счет усиления хондрогенных транскрипционных факторов. Ткань англ. 2016;22(3–4):363–374. [PubMed] [Академия Google]
59.
Kim J.H., Lee M.C., Seong S.C., Park K.H., Lee S. Усиленная пролиферация и хондрогенная дифференцировка стволовых клеток, полученных из синовиальной оболочки человека, увеличенных с помощью основного фактора роста фибробластов. Ткань англ. 2010;17(7–8):991–1002. [PubMed] [Google Scholar]
60. Gawlitta D., Benders K.E., Visser J., van der Sar A.S., Kempen D.H., Theyse L.F., Malda J., Dhert WJ. Децеллюляризованный матрикс, полученный из хряща, как субстрат для эндохондральной регенерации кости . Ткань англ. 2015;21(3–4):694–703. [PubMed] [Google Scholar]
61. Daly A.C., Cunniffe G.M., Sathy B.N., Jeon O., Alsberg E., Kelly D.J. 3D-биопечать шаблонов, вдохновленных развитием, для инженерии цельных костных органов. Adv Healthc Mater. 2016;5(18):2353–2362. [PubMed] [Google Scholar]
62. Фриман Ф.Э., Бреннан М.А., Броу Д.К., Рено А., Де Лима Дж., Келли Д.Дж., Макнамара Л.М., Лайролл П. Подход к восстановлению кости, основанный на инженерных разработках. : эндохондральное праймирование усиливает васкуляризацию и образование новой кости при дефекте критического размера.
Передний. биоинж. Биотехнолог. 2020;8(230) [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
63. Каннифф Г.М., Диаз-Пайно П.Дж., Рэми Дж.С., Махон О.Р., Данн А., Томпсон Э.М., О’Брайен Ф.Дж., Келли Д.Дж. Каркасы на основе внеклеточного матрикса пластинки роста для заживления больших костных дефектов. Евро. Клетка. Матер. 2017; 33:130–142. [PubMed] [Google Scholar]
64. Броу Д.К., Диас-Пайно П.Дж., Фриман Ф.Е., Шипани Р., Бурдис Р., Ахерн Д.П., Налти Дж.М., Гулер С., Рэндалл Л.Д., Бакли С.Т., Брама П.А.Дж., Келли Д.Дж. Каркасы из двухслойного внеклеточного матрикса с анизотропной архитектурой пор определяют организацию ткани во время восстановления костно-хрящевого дефекта. Акта Биоматер. 2022; 143: 266–281. [PubMed] [Академия Google]
65. Hunziker E.B., Stahli A. Хирургическое сшивание суставного хряща вызывает остеоартрозоподобные изменения. Хрящевой остеоартрит. 2008;16(9):1067–1073. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
66. Knecht S., Erggelet C.
, Endres M., Sittinger M., Kaps C., Stussi E. Механические испытания методов фиксации тканей на основе каркаса. инженерные трансплантаты. Дж. Биомед. Матер. Рез. Б заявл. Биоматер. 2007;83(1):50–57. [PubMed] [Google Scholar]
67. Бриттберг М., Шегрен-Янссон Э., Линдал А., Петерсон Л.Дж.Б. Влияние фибринового герметика (Tisseel®) на заживление костно-хрящевого дефекта коленного сустава кролика. 1997;18(3):235–242. [PubMed] [Google Scholar]
68. Фридман Дж. М., Сеннетт М. Л., Бонадио М. Б., Оржи К. О., Нойвирт А. Л., Кеа Н., Кэри Дж. Л., Мутос Ф. Т., Эстес Б. Т., Гуилак Ф., Мадри Х., Маук Р. Л., Додж Г.Р. Сравнение методов фиксации каркасов из 3D-ткани из поли(капролактона) для восстановления хряща на модели крупной свиньи, несущей вес. Хрящ. 2018;9(4):428–437. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
69. Kreuz P.C., Steinwachs M.R., Erggelet C., Krause S.J., Konrad G., Uhl M., Sudkamp N. Результаты после микроперелома полнослойных хрящевых дефектов в различные отсеки в колене.
Хрящевой остеоартрит. 2006;14(11):1119–1125. [PubMed] [Google Scholar]
70. Зальцманн Г.М., Сах Б., Судкамп Н.П., Нимейер П. Реоперационные характеристики после микропереломов поражений коленного хряща у 454 пациентов. Колено Хирург. Спортивный травматол. Артроск. 2013;21(2):365–371. [PubMed] [Google Scholar]
71. Джей Г.Д., Уоллер К.А. Биология лубрицина: движение в суставах почти без трения. Матрица биол. 2014;39:17–24. [PubMed] [Google Scholar]
72. Schmidt T.A., Gastelum N.S., Han E.H., Nugent-Derfus GE, Schumacher B.L., Sah R.L. Дифференциальная регуляция метаболизма протеогликана 4 в хряще с помощью IL-1alpha, IGF-I и TGF- бета1. Хрящевой остеоартрит. 2008;16(1):90–97. [PubMed] [Google Scholar]
73. Lee S.Y., Niikura T., Reddi AH. Белок поверхностной зоны (лубрицин) в различных отделах ткани коленного сустава: модуляция путем преобразования фактора роста бета-1 и интерлейкина-1 бета. Ткань англ. 2008;14(11):1799–1808. [PubMed] [Google Scholar]
74.
Lu XL, Mow VC. Биомеханика суставного хряща и определение свойств материала. Мед. науч. Спортивное упражнение. 2008;40(2):193–199. [PubMed] [Google Scholar]
75. Sun H., Mei L., Song C., Cui X., Wang P. Распад, абсорбция и выведение имплантата на основе PCL in vivo. Биоматериалы. 2006;27(9): 1735–1740. [PubMed] [Google Scholar]
76. Вудрафф М.А., Хатмахер Д.В. Возвращение забытого полимера — поликапролактона в XXI веке. прог. Полим. науч. 2010;35(10):1217–1256. [Google Scholar]
77. Lam C.X., Hutmacher D.W., Schantz J.T., Woodruff M.A., Teoh S.H. Оценка деградации поликапролактонового каркаса в течение 6 месяцев in vitro и in vivo. Дж. Биомед. Матер. Рез. Часть A: Официальный журнал Общества биоматериалов, Японского общества биоматериалов, Австралийского общества биоматериалов и Корейского общества биоматериалов. 2009 г.;90(3):906–919. [PubMed] [Google Scholar]
78. Юссеф А., Холлистер С.Дж., Далтон П.Д. Аддитивное производство полимерных расплавов для имплантируемых медицинских изделий и матриксов.
Биофабрикация. 2017;9(1) [PubMed] [Google Scholar]
79. Madry H., Orth P., Cucchiarini M. Роль субхондральной кости в дегенерации и восстановлении суставного хряща. JAAOS — журнал Американской академии хирургов-ортопедов. 2016;24(4):e45–e46. [PubMed] [Google Scholar]
80. Chu C.R., Fortier L.A., Williams A., Payne K.A., McCarrel T.M., Bowers M.E., Jaramillo D. Концентрат костного мозга с минимальными манипуляциями по сравнению с микрофрактурным лечением полнослойных хрящевых дефектов: a однолетнее исследование на лошадиной модели. J Bone Joint Surg Am. 2018;100(2):138–146. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
81. Orth P., Duffner J., Zurakowski D., Cucchiarini M., Madry H. Шила малого диаметра улучшают восстановление суставного хряща после лечения микропереломов в поступательной модели животных. Являюсь. Дж. Спорт Мед. 2016;44(1):209–219. [PubMed] [Google Scholar]
82. Eldracher M., Orth P., Cucchiarini M., Pape D., Madry H. Небольшие субхондральные отверстия улучшают стимуляцию костного мозга дефектов суставного хряща.
Являюсь. Дж. Спорт Мед. 2014;42(11):2741–2750. [PubMed] [Google Scholar]
83. Zlotnick H., Locke R., Stoeckl B., Patel J., Gupta S., Browne K., Koh J., Carey J., Mauck R. Заметные различия в местных ремоделирование костей в ответ на различные методы стимуляции костного мозга у крупных животных. Евро. Клетка. Матер. 2021; 41: 546–557. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
84. Зедде П., Кудони С., Джачетти Г., Манунта М.Л., Масала Г., Брунетти А., Манунта А.Ф. Ремоделирование субхондральной кости: сравнение нанопереломов с микропереломами. Исследование овец in vivo. Суставы. 2016;4(2):87–93. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
85. Гэннон А.Р., Нагель Т., Белл А.П., Эйвери Н.К., Келли Д.Дж. Постнатальные изменения механических свойств суставного хряща обусловлены эволюцией его коллагеновой сети. Евро. Клетка. Матер. 2015;29(105):105–121. ; обсуждение 121-3. [PubMed] [Академия Google]
86. Фримен Ф.Э., Питакко П., ван Доммелен Л.Х.
, Налти Дж., Броу Д.К., Шин Дж.-Ю., Алсберг Э., Келли Д.Дж. Трехмерная биопечать пространственно-временных моделей факторов роста для жесткого контроля регенерации тканей. науч. Доп. 2020;6(33) [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
87. Almeida H.V., Liu Y., Cunniffe G.M., Mulhall K.J., Matsiko A., Buckley C.T., O’Brien F.J., Kelly D.J. Контролируемое высвобождение трансформирующего фактора роста-бета3 из каркасов, полученных из хрящевого внеклеточного матрикса, для стимулирования хондрогенеза стволовых клеток, полученных из тканей суставов человека. Акта Биоматер. 2014;10(10):4400–4409. [PubMed] [Google Scholar]
Окрашивание по Альберту — принцип, реагенты, процедура, результаты, интерпретация
Фейт Мокоби
Со временем были разработаны специальные красители для идентификации видов бактерий, их морфологической дифференциации и даже для характеризации их особых признаков.
Наиболее распространены окрашивание по Граму, кислотоустойчивое окрашивание, окрашивание эндоспор. Каждое из этих пятен направлено на идентификацию и характеристику бактерий на основе их морфологии.
Пятно Альберта ничем не отличается. Его применение направлено на выявление бактерий, содержащих особые структуры, известные как метахроматические гранулы. Другими методами окрашивания, которые используются для обнаружения гранул в цитоплазматической мембране бактерий, являются окрашивание Нессерса и окрашивание Пью.
Окрашивание по Альберту четко идентифицирует метахроматические гранулы, обнаруженные в Corynebacterium diphtheriae .
Коринебактерии — грамположительные, не образующие спор, неподвижные палочки, содержащие метахроматические (волютиновые) гранулы , представляющие собой внутриклеточные тельца включения, обнаруженные в цитоплазматической мембране некоторых бактериальных клеток для хранения сложных неорганических полифосфатов (поли-Ф) и ферментов.
Когда эти гранулы окрашивают красителем метиленовым синим, они приобретают красновато-фиолетовый цвет, а не синий краситель.
Наиболее распространенной коринебактерией является
Обычно эти бактерии первоначально культивируют в селективной среде либо на агаре Леффлера, либо на теллуритном агаре Мюллера-Миллера, либо на теллуритном агаре Тинсдейла, и выделяют их колонии для приготовления жидкой культуры, которую затем используют для окрашивания. Окрашивание по Альберту действует только как подтверждающее окрашивание бактерий. Будучи дифференциальным красителем, он может окрашивать только гранулы волютина, поэтому бактерии без этих гранул не могут быть ни окрашены, ни идентифицированы с помощью этого метода.
Содержание
Объектив Для окрашивания и изучения метахроматических гранул из культуры Corynebacterium diphtheriae .
Метод окрашивания по Альберту направлен на обнаружение метахроматических гранулированных телец Corynebacterium diphtheriae . Пятно Альберта состоит из двух растворов для окрашивания; обозначенные как Albert Solution 1 и Albert Solution 2, , их составы;
Альберт Раствор 1:
- толуидиновый синий, малахитовый зеленый, ледяная уксусная кислота и спирт
Раствор Альберта 2:
- Йод и йодид калия в воде
Для использования окрашивающих растворов Альберта каждый из двух растворов должен быть эффективно приготовлен с правильным процентным содержанием компонентов, чтобы после окрашивания можно было продемонстрировать гранулы с правильным цветом.
Окрашивающий раствор Альберта 1 действует как окрашивающий раствор, а раствор Альберта 2 действует как протрава, то есть ионный элемент, который связывает и удерживает химический краситель, заставляя его прилипать к микроорганизму.
Краситель Albert Stain 1: Приготовление 100 мл красителя Albert 1
- В 100 мл воды добавить 0,1 мл ледяной уксусной кислоты
- Добавить в раствор 2 мл 95% этанола
- Затем растворить 0,15 г толуидинового синего в растворе
- Наконец, растворите 0,2 г малахитовой зелени в растворе .
Краситель Albert Stain 2: Приготовление 300 мл красителя Albert Stain 2
- Растворить 2 г йода в 50 мл дистиллированной воды
- Добавить 250 мл воды в раствор
- Растворить 3 г йодида калия в растворе
Реактивы:
Раствор для окрашивания по Альберту 1
Раствор для окрашивания по Альберту 2
Дистиллированная вода
A. Окрашивание:
- В асептических условиях возьмите петлевую культуру Corneybacterium diphtheriae
- Сделайте мазок из центра чистого стерильного предметного стекла
- Аккуратно нагрейте мазок
- На штатив для окрашивания поместите смазанное предметное стекло.
- Добавьте раствор для окрашивания Альберта 1 в мазок и оставьте на 3-5 минут
- Промойте смазанное предметное стекло слабо проточной водой из-под крана
B. Морилка
- Добавьте красящий раствор Альберта 2 и оставьте на 1 минуту
- Промойте предметное стекло слегка проточной водой из-под крана.
- Блот, чтобы высушить смазанное предметное стекло
- Добавить кедровое масло на мазок
- Затем наблюдайте под микроскопом в иммерсионном масле при 1000x
Метахроматические гранулы окрашиваются в голубовато-черный цвет, тогда как остальная часть микробной клетки окрашивается в зеленый цвет.
Интерпретация окрашивания по Альберту Corynebacterium diphtheriae Цитоплазматическая мембрана содержит гранулы волютина, также известные как метахроматические гранулы, которые являются характерной чертой этих бактерий.
При окраске растворами Альберта гранулы окрашиваются в виде округлых сине-черных точек на дне L- или V-образных зеленых бацилл.
- Он в основном используется для идентификации метахроматических гранул, обнаруженных в болезнетворных микроорганизмах, таких как Коринебактерии дифтерии .
- Будучи дифференциальным красителем, он помогает отличить Corneybacterium diphtheriae от других непатогенных дифтероидов, у которых отсутствуют метахроматические гранулы.
- Его можно использовать только для окрашивания метахроматических зернистых телец, но не каких-либо включений в цитоплазматической мембране.
- Образование гранул волютина в Corynebacterium glutamicum Шринивас Редди Паллерла, Сандра Кнебель, Тино Полен, Питер Клаут, Джулиан Холлендер, Фолькер Ф. Вендиш, Зигфрид М. Шоберт
- Бхумбла, Упасана. (2018). Окрашивание Альберта. 10.5005/jp/books/14206_10.
- Мерфи-младший. Коринебактерии дифтерии. В: Барон С., редактор. Медицинская микробиология. 4-е издание. Галвестон (Техас): Медицинское отделение Техасского университета в Галвестоне; 1996. Глава 32. Доступно по адресу: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK79.71/
Вендиш, Зигфрид М. ШобертИсточники в Интернете
- 1% – https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK8477/
- 1% – https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK7971/
- 1% – https://sciencing.com/advantages-stained-bacteria-12011291.html
- 1% – https://science.umd.edu/classroom/bsci424/PathogenDescriptions/Corynebacterium.htm
- 1% – https://quizlet.com/50988479/staining-methods-flash-cards/
- 1% – https://microbeonline.com/
- 1% – http://microrao.com/alberts_staining.htm
- <1% – https://www.slideshare.net/RESHMASOMAN3/staining-techniques
- <1% – https://www.
