Коса рыбий хвост, колосок, как плести: фото видео мастер-класс
Бьюти-гид
Fashion-стилист
Содержание статьи:
Такой стиль плетения кос только на первый взгляд кажется сложным, на самом деле «колосок» плетется из двух прядей и достаточно быстро, зато выглядит такая прическа совершенно обворожительно.
- Фото
- Getty Images
ВАЖНО!
Коса «колосок» («рыбий хвост») плетется на чистых волосах, сухих либо слегка влажных, если они своенравные и непослушные. Особенно эффектно такое тонкое плетение выглядит на прямых волосах, поэтому обладательницам кудрей рекомендуется пройтись по волосам круглой щеткой или утюжком, так рисунок косы будет просматриваться лучше.
- Фото
- Getty Images
Схема плетения косы «рыбий хвост»
Подробнее технологию плетения косы «рыбий хвост» («колосок») разберем в фотоуроке.
Как заплести «колосок»: пошаговые фото
- Фото
- Wday.ru
1. Тщательно расчешите волосы. Выделите в теменной зоне треугольную прядь.
- Фото
- Wday.ru
2. Разделите ее на три равные части.
- Фото
- Wday.ru
3. Переплетите пряди между собой 1 раз классическим способом, таким образом у вас в руках останется две пряди (это произойдет за счет соединения в одной руке двух прядей, другая прядь останется во второй руке).
- Фото
- Wday.ru
4.
С края более широкой части отделите тонкую прядку и перекиньте ее внутрь плетения, соединяя с левой частью.
- Фото
- Wday.ru
5. Аналогичным образом выделите тонкую прядь слева, перекиньте внутрь и соедините с правой частью, при этом с обеих сторон делается подхват — захватывается прядь свободных волос по ходу движения и вплетается в общий рисунок, как это обычно делается при создании французской косы.
Чтобы подхват выглядел аккуратным и рисунок косы не нарушался, выделяйте пряди аккуратно, примерно одинакового размера.
- Фото
- Wday.ru
6. Продолжайте плетение, делая с каждой стороны подхват. Дойдя до краевой линии, где подхваты заканчиваются, продолжайте перекидывать тонкие прядки примерно равной ширины с боков внутрь.
Кончик косы зафиксируйте резинкой.
- Фото
- Wday.ru
7. Слегка вытяните пряди из плетения, чтобы оно выглядело более ажурным и объемным, зафиксируйте лаком.
При необходимости закрепите выбивающиеся прядки с боков невидимками, это особенно актуально для обладательниц ступенчатых стрижек.
Французская коса «рыбий хвост» готова! Если у вас тонкие волосы, сделайте легкий прикорневой начес перед плетением колоска. В этом случае не стоит слишком натягивать пряди. Носить такую косу можно прямо или набок, а можно уложить ее в элегантный пучок на затылке и закрепить шпильками. Фантазируйте и будьте красивы!
Вернуться в начало статьи
- Фото
- Wday.ru
- Фото
ru» data-v-586212d6=»»>Wday.ruКак плети «колосок»: видео
Лиля Белая
Сегодня читают
«С неба упадут люди, и это станет началом конца» — путешественник во времени назвал самый страшный день 2023 года
Девушка ростом 110 см встречается с 2-х метровым парнем — посмотрите, как выглядит необычная пара
Анастасия Волочкова засняла дряблые колени, но случайно показала больше — поклонники в ужасе
Это сулит неудачи: 12 признаков того, что домовой в вашей квартире недоволен жизнью
Тест: какой домовой живет у тебя дома?
Коса рыбий хвост: техника плетения
Косу рыбий хвост еще называют «колосок». Это идеальная коса для тех, кто предпочитает оригинальность. Коса кажется достаточно сложной, но это не так. Многим она дается гораздо легче других кос, хотя плетется из четырех прядей, а не из трех. Обычно берут четыре пряди одинаковой толщины, но можно комбинировать толстые с тонкими, тогда коса будет выглядеть еще интереснее.
Это немного дольше, но в результате вы получите роскошную прическу.
Коса рыбий хвост отлично смотрится заплетенной классическим вариантом (от затылка), от хвоста или сбоку.
Коса рыбий хвост
Разделить волосы на 2 равные пряди с пробором посредине. Подхватить маленькую крайнюю левую прядь. Скрестить ее вправо и соединить с правой половиной. Теперь подхватить маленькую крайнюю правую прядь и скрестить ее налево, соединив с левой половиной. Повторять шаги 2—4, пока не вплетете все волосы. Зафиксировать косу маленькой резинкой.
Косе рыбий хвост также можно придать объем, слегка вытащив пряди.
Коса рыбий хвост боковой
Рыбий хвост или колосок, — это классический вид косы. Здесь показано, как плести ее на одну сторону, но алгоритм одинаков для любого вида «колоска». Такая прическа отлично подходит для волос на третий или четвертый день после мытья!
Соберите все волосы в низкий хвост сбоку и скрепите его прозрачной резинкой.
Разделите хвост на две части. Указательным пальцем отделите небольшую прядь от правой части волос. . Направьте указательный палец к левой части волос. Возьмите эту тонкую прядь и соедините ее с левой частью волос. Указательным пальцем отделите тонкую прядь от левой части косы. Направьте указательный палец к правой части. Соедините эту прядь с правой частью косы. Вот форма вашей косы уже видна. Старайтесь сначала плести как можно туже — позже вы сможете расплющить косу. Продолжайте плести так по всей длине волос. Скрепите конец косы прозрачной резинкой и аккуратно, чтобы не зацепить волосы, снимите верхнюю резинку. . А теперь осталось расплющить «колосок». Можете оставить его тугим, а можете вытянуть несколько прядей, чтобы придать ему несколько небрежный вид. Это зависит только от вашего вкуса.
Коса французский рыбий хвост
Чтобы выполнить эту прическу, вы должны сначала научиться плести обычный «рыбий хвост». А если вы это умеете, то заплести французский будет для вас легче легкого!
Выделите небольшую прядь волос.
Ваша коса начнется в том месте, где вы выделите эту прядь. Разделите прядь на две части. Держа обе части в левой руке, правой отделите тонкую прядь волос снизу под правой частью косы. Левой рукой дотянитесь до этой тонкой пряди, возьмите ее, перенесите через правую часть косы и соедините с левой частью. Переложите обе части косы в правую руку и отделите тонкую прядь снизу под левой частью косы. Правой рукой дотянитесь до нее, перенесите через левую часть косы и соедините с правой.
Перенесите новую прядь через левую часть косы и соедините с правой. Повторите шаги 7—10. Закрепите конец прозрачной резинкой. Расплющите косу, слегка потянув пряди в стороны. Так ваша коса рыбий хвост будет выглядеть толще, пушистее и объемнее.
Коса рыбий хвост на половине волос
Для начала я накрутила волосы плойкой диаметром 25 мм. Соберите верхнюю половину волос и закрепите ее прозрачной резинкой. Задействуйте только верхние слои, а не всю массу волос. Теперь вы можете воспользоваться петлей Topsy Tail либо проделайте в волосах над резинкой отверстие и проверните хвост через это отверстие. Разделите хвост на две части и начинайте плести «колосок». Закончив плести, закрепите косу прозрачной резинкой и слегка расплющите, потянув пряди в стороны. Тут вы можете проявить фантазию — растрепать косу, чтобы она имела по-настоящему богемный стиль, либо оставить ее строгой и аккуратной.
Узел из косы рыбий хвост
Разделите волосы на две части.
Закрепите каждую часть прозрачной резинкой на расстоянии 25 мм от пробора. Заплетите «колосок» из одной части. Расплющите получившийся «колосок», чтобы он был объемнее. Повторите то же самое с другой частью волос и спрячьте пробор, вытащив из каждой косы понемногу волос. Существует несколько способов выполнения узла из «колосков». Первый способ — уложить обе косы по кругу. Один рыбий хвост оборачивается вокруг второго, а затем второй вокруг первого — образуется круг из кос. Другой способ: уложить косы восьмеркой. Вы не оборачиваете одной косой другую, а заводите ее за другую и затем возвращаетесь через центр.
Боковой узел из косы рыбий хвост
Выполните шаги 1—8 прически Боковой рыбий хвост. Начните с хвоста на одну сторону, а затем заплетите на всю его длину косу рыбий хвост. Закрепите конец прозрачной резинкой и расплющите косу, придав ей больше объема и полноты. Просто заверните ваш «колосок» к лицу, придав косе форму перевернутой буквы «С».
Закрепите прическу невидимками и сбрызните лаком сильной фиксации.
подтипов белков хвостовых шипов предсказывают диапазон хозяина Фаги Ackermannviridae
1. Xing S., Ma T., Zhang X., Huang Y., Mi Z., Sun Q. Первая полная последовательность генома вирулентного бактериофаг, поражающий условно-патогенный возбудитель Serratia рубида. Арх Вирол. 2017;162(7):2021–2028. doi: 10.1007/s00705-017-3300-x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Barbirz S., Müller J.J., Uetrecht C., Clark A.J., Heinemann U., Seckler R. Кристаллическая структура фага Escherichia coli HK620 хвостовой шип: модули эндогликозидазы подовирусного хвостового шипа эволюционно связанные. Мол микробиол. 2008;69: 303–316. doi: 10.1111/j.1365-2958.2008.06311.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Greenfield J., Shang X., Luo H., Zhou Y., Linden S.B., Heselpoth R.D. Структура и функция бактериофага CBA120 ORF211
(TSP2), детерминант специфичности фага по отношению к E. coli
О157:Н7. Научный доклад 2020; 10 (1) doi: 10.
1038/s41598-020-72373-0. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4. Нобрега Ф.Л., Влот М., де Йонге П.А., Дрисенс Л.Л., Бомонт Х.Дж.Э., Лавин Р. Механизмы наведения хвостатых бактериофаги. Nat Rev Microbiol. 2018;16(12):760–773. дои: 10.1038/s41579-018-0070-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
5. Liu B, Furevi A, Perepelov A V, Guo X, Cao H, Wang Q, et al. Структура и генетика О-антигенов кишечной палочки. ФЭМС микробиол Ред. 2020; 44: 655–83. https://doi.org/10.1093/femsre/fuz028. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]
6. Casjens S.R., Thuman-Commike P.A. Эволюция мозаично родственного хвостатого бактериофага геномы через призму вириона фага P22 сборка. Вирусология. 2011;411(2):393–415. doi: 10.1016/j.virol.2010.12.046. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
7. Шварцер Д., Бюттнер Ф.Ф.Р., Браунинг К., Назаров С., Рабш В., Бете А. Мультивалентный адсорбционный аппарат объясняет широкое
Диапазон хозяев Phage phi92: комплексный геномный и
Структурный анализ.
Дж Вирол. 2012;86(19):10384–10398. doi: 10.1128/ОВИ.00801-12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
8. Гебхарт Д., Уильямс С.Р., Шолль Д. Бактериофаг SP6 кодирует второй белок хвостового шипа который распознает Salmonella enterica серогрупп C2 и С3. Вирусология. 2017; 507: 263–266. doi: 10.1016/j.virol.2017.02.025. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
9. Латка А., Лейман П.Г., Друлис-Кава З., Брайерс Ю. Моделирование архитектуры деполимеразосодержащих рецептор-связывающие белки фагов клебсиеллы. Фронт микробиол. 2019; 10 doi: 10.3389/fmicb.2019.0264910.3389/fmicb.2019.02649.s00110.3389/fmicb.2019.02649.s00210.3389/fmicb.2019.02649.s003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Adriaenssens E.M., Ackermann H.-W., Anany H., Blasdel B., Connerton IF, Goulding D. Предложен новый род бактериофагов: «Виуналикевирус» Arch Virol. 2012;157(10):2035–2046. doi: 10.1007/s00705-012-1360-5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11.
Лефковиц Э.Дж., Демпси Д.М., Хендриксон Р.К., Ортон Р.Дж., Сидделл С.Г., Смит Д.Б. Таксономия вирусов: База данных Международного
Комитет по таксономии вирусов (ICTV) Nucleic Acids Res. 2018;46:D708–D717. doi: 10.1093/nar/gkx932. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Каттер Э.М., Скутт-Какариа К., Бласдел Б., Эль-Шибины А., Кастано А., Брайан Д. Характеристика злодея как фаг, специфичный для Кишечная палочка O157:H7. Вирол Дж. 2011; 8: 1–14. doi: 10.1186/1743-422X-8-430. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
13. Casjens S.R., Jacobs-Sera D., Hatfull G.F., Hendrix R.W. Геномная последовательность фага Salmonella enterica Дет7. Объявление генома. 2015;3:2046. doi: 10.1128/genomeA.00279-15. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
14. Adriaenssens EM, van Vaerenbergh J, Vandenheuvel D, Dunon V,
Ceyssens PJ, de Proft M, et al. Связанный с T4 бактериофаг LIMEstone
изоляты для борьбы с мягкой гнилью картофеля, вызываемой Dickeya
солани’.
15. Anany H., Lingohr E.J., Villegas A., Ackermann H.-W., She Y.-M., Griffiths M.W. Бактериофаг Shigella boydii, напоминающий Фаг сальмонеллы VII. Вирол Дж. 2011;8(1) doi: 10.1186/1743-422X-8-242. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Мин Л., Лессор Л., О’Лири К., Бонасера Р., Гилл Дж., Лю М. Полная последовательность генома Klebsiella pneumoniae Миофаг Менлоу. Microbiol Resour объявляет. 2019; 8:1–2. doi: 10.1128/mra.01338-19. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Хсу Ч.Р., Линь Т.Л., Пан Ю.Дж., Се П.Ф., Ван Дж.Т. Изоляция Бактериофаг, специфичный для нового капсульного типа Klebsiella pneumoniae и характеристика его полисахарид-деполимеразы. PLoS один 2013;8. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0070092. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]
18. Fan C., Tie D., Sun Y., Jiang J., Huang H., Gong Y. Характеристика и геномный анализ Escherichia
coli O157: Бактериофаг H7 FEC14, новый представитель рода
Куттервирус.
Карр микробиол. 2021;78(1):159–166. doi: 10.1007/s00284-020-02283-x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Шахрбабак С.С., Ходабандехлоу З., Шахверди А.Р., Скурник М., Акерманн Х.В., Варджосало М. Выделение, характеристика и полный геном последовательность Факси: Фаг Escherichia coli O157: Н7. Microbiol (Соединенное Королевство) 2013;159:1629–1638. doi: 10.1099/микрофон 0.063776-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
20. Платтнер М., Шнейдер М.М., Арбатский Н.П., Шашков А.С., Чижов А.О., Назаров С. Строение и функции разветвленной Рецепторно-связывающий комплекс бактериофага СВА120. Дж Мол Биол. 2019;431(19):3718–3739. doi: 10.1016/j.jmb.2019.07.022. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Walter M., Fiedler C., Grassl R., Biebl M., Rachel R., Hermo-Parrado X.L. Структура рецептор-связывающего белка Бактериофаг Det7: хвостовой шип подовируса в Миовирус. Дж Вирол. 2008;82(5):2265–2273. doi: 10.1128/ОВИ.01641-07. [Статья PMC free] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22.
Steinbacher S., Baxa U., Miller S., Weintraub A., Seckler R., Huber R. Кристаллическая структура белка хвостового шипа фага P22
в комплексе с Salmonella sp. Рецепторы О-антигена. Proc Natl Acad Sci U S A. 1996;93(20):10584–10588. doi: 10.1073/pnas.93.20.10584. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Chen C., Bales P., Greenfield J., Heselpoth R.D., Nelson D.C., Herzberg O. Кристаллическая структура ORF210 из E. coli O157: фаг h2 CBA120 (TSP1), предполагаемый белок хвостового шипа. ПЛОС ОДИН. 2014;9(3):e93156. doi: 10.1371/journal.pone.0093156. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Greenfield J., Shang X., Luo H., Zhou Y., Heselpoth R.D., Nelson D.C. Структура и механизм гликозидазы хвостового шипа ORF212 из фага E. coli O157: H7 CBA120 (TSP3), научный отчет, 2019 г.;9:1–11. doi: 10.1038/s41598-019-43748-9. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Тейлор Н.М.И., Прохоров Н.С., Герреро-Феррейра Р.
К., Шнайдер М.М., Браунинг С., Голди К.Н. Структура базовой пластины Т4 и ее функции в
вызывая сокращение оболочки. Природа. 2016; 533(7603):346–352. doi: 10.1038/nature17971. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Фонг К., Тремблей Д.М., Делакис П., Гудридж Л., Левеск Р.К., Муано С. Разнообразие и специфичность хозяина, выявленные биологическими Характеристика и полногеномное секвенирование бактериофагов Заражение Salmonella enterica. Вирусы. 2019;11 doi: 10.3390/v11090854. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27. Yan T., Liang Lu., Yin P., Zhou Y., Mahdy Sharoba A., Lu Q. Применение нового фага LPSEYT для биологических исследований. контроль сальмонеллеза в пищевых продуктах. Микроорганизмы. 2020;8(3):400. doi: 10.3390/микроорганизмы8030400. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Bai J., Jeon B., Ryu S. Эффективное ингибирование Salmonella Typhimurium в
свежие продукты с помощью фагового коктейля, нацеленного на несколько хозяев
рецепторы.
Пищевой микробиол. 2019;77:52–60. doi: 10.1016/j.fm.2018.08.011. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Newase S., Kapadnis BP, Shashidhar R. Изоляция и характеристика последовательности генома Бактериофаг vB_SalM_PM10, вирус Cba120, одновременно Заражение Salmonella enterica Серовары Typhimurium, Typhi и Энтеритидис. Карр микробиол. 2019;76(1):86–94. doi: 10.1007/s00284-018-1588-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Пак М., Ли Дж.-Х., Шин Х., Ким М., Чой Дж., Канг Д.-Х. Характеристика и сравнительный геномный анализ новый бактериофаг SFP10, одновременно ингибирующий оба Salmonella enterica и Escherichia coli O157:H7. Appl Environ Microbiol. 2012;78(1):58–69. doi: 10.1128/AEM.06231-11. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Кабанова А.П., Шнейдер М.М., Корженков А.А., Бугаева Е.Н., Мирошников К.К., Здоровенко Е.Л. Хозяйственная специфичность бактериофага дикеи РР35
направляется взаимодействием хвостового шипа с бактериальным о-антигеном,
возможность инфицирования альтернативными непатогенными бактериями
хозяин.
Фронт микробиол. 2019;9 doi: 10.3389/fmicb.2018.0328810.3389/fmicb.2018.03288.s00110.3389/fmicb.2018.03288.s002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32. Содинг Дж., Бигерт А., Лупас А.Н. Интерактивный сервер HHpred для определения гомологии белков обнаружение и предсказание структуры. Нуклеиновые Кислоты Res. 2005; 33 (веб-сервер): W244–W248. doi: 10.1093/nar/gki408. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Gencay Y.E., Gambino M., Prüssing TF, Brøndsted L. Роды бактериофагов и их рецепторы основные детерминанты круга хозяев. Окружающая среда микробиол. 2019;21(6):2095–2111. doi: 10.1111/emi.2019.21.issue-610.1111/1462-2920.14597. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
34. Гарсия-Нафриа Дж., Уотсон Дж.Ф., Грегер И.Х. Клонирование IVA: универсальная система клонирования с одной пробиркой используя бактериальную сборку In Vivo. Научный доклад 2016; 6: 1–12. doi: 10.1038/srep27459. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35.
Casjens S.R., Grose J.H. Вклад Р2- и Р22-подобных профагов в
понимание огромного разнообразия и изобилия хвостатых
бактериофаги. Вирусология. 2016; 496: 255–276. doi: 10.1016/j.virol.2016.05.022. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Лейман П.Г., Молинью И.Дж. Эволюция новой ферментативной активности из того же мотива складывать. Мол микробиол. 2008; 69: 287–290. doi: 10.1111/j.1365-2958.2008.06241.x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
37. Актер М., Браун Н., Клоки М., Йесмин М., Тарек Т.М., Баддам Р. Распространенность Shigella boydii в Бангладеш: изоляция и характеристика редкого фага MK-13, который может надежно Определите тип шигеллеза, вызванного Shigella boydii 1. Фронт микробиол. 2019;10 doi: 10.3389/fmicb.2019.0246110.3389/fmicb.2019.02461.s00110.3389/fmicb.2019.02461.s00210.3389/fmicb.2019.02461.s00310.3389/fmicb.2019.02461.s00410.3389/fmicb.2019.02461.s005. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38.
Chae S.J., Kwon T., Lee S., Kang Y.H., Chung G.T., Kim D.W. Последовательность генома бактериофага GG32, который может
инфицируют как Salmonella enterica серовара Typhimurium, так и
Кишечная палочка O157: H7. Объявление генома. 2016;4:2015–2016. doi: 10.1128/genomeA.00802-16. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. van Mierlo J., Hagens S., Witte S., Klamert S., van de Straat L., Fieseler L. Полные геномные последовательности фагов Escherichia coli vB_EcoM-EP75 и vB_EcoP-EP335. Microbiol Resour объявляет. 2019;8(16) doi: 10.1128/MRA.00078-19. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40. C.E.C. Каз И. Почвенный В.Е. Березин Полная последовательность генома Фаг Escherichia coli vB_EcoM Sa157lw, выделенный из поверхностных вод Собрано в 2019 г. Салинас, Калифорния 6 7 [бесплатная статья PMC] [PubMed]
41. Картер С.Д., Паркс А., Абуладзе Т., Ли М., Вулстон Дж., Магноне Дж. Коктейль из бактериофагов значительно снижает
Escherichia coli O157: заражение H7 салата и говядины, но
не защищает от повторного загрязнения.
Бактериофаг. 2012;2(3):178–185. doi: 10.4161/bact.22825. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
42. Broeker N.K., Roske Y., Valleriani A., Stephan M.S., Andres D., Koetz J. Высвобождение ДНК с временным разрешением из O-антигена -специфический Сальмонеллезный бактериофаг с сократительным хвостом. Дж. Биол. Хим. 2019;294(31):11751–11761. doi: 10.1074/jbc.RA119.008133. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
43. Кошник-Квасьницкая К., Цеминьская К., Грабский М., Грабовский Л., Гурняк М., Юрчак-Курек А. Характеристика серии из трех бактериофагов заражение штаммами Salmonella enterica. Int J Mol Sci. 2020;21(17):6152. doi: 10.3390/ijms21176152. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44. Hyeon S.H., Lim W.K., Shin HJ Новый биосенсор поверхностного плазмонного резонанса, использующий
полноразмерный белок хвоста фага Det7 для быстрого и селективного
обнаружение серовара Salmonella enterica
Тифимуриум. Биотехнология Appl Biochem.
2021;68(1):5–12. doi: 10.1002/bab.v68.110.1002/bab.1883. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
45. Гутьеррес Дж., Се Ю., Гилл Дж.Дж., Лю М., Деннехи Дж.Дж. Полная последовательность генома Salmonella enterica Серовар Typhimurium Myophage Mutine. Microbiol Resour объявляет. 2019;8(19) doi: 10.1128/MRA.00401-19. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
46. Witte S., Zinsli L.V., Gonzalez-Serrano R., Matter C.I., Loessner M.J., van Mierlo J.T. Структурно-функциональная характеристика рецептор-связывающие белки фагов Escherichia coli O157 EP75 и ЕР335. Comput Struct Biotechnol J. 2021;19: 3416–3426. doi: 10.1016/j.csbj.2021.06.001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Thanh N.C., Nagayoshi Y., Fujino Y., Iiyama K., Furuya N., Hiromasa Y. Характеристика и структура генома вирулентных
Фаг EspM4VN для борьбы с Enterobacter sp. M4 изолирован от растения
Мягкая гниль. Фронт микробиол. 2020;11 doi: 10.3389/fmicb.2020.0088510.
3389/fmicb.2020.00885.s00110.3389/fmicb.2020.00885.s00210.3389/fmicb.2020.00885.s00310.3389/fmicb.2020.00885.s00410.3389/fmicb.2020.00885.s005 . [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
48. Дэй А., Ан Дж., Салмонд Г.П.К. Джамбо-бактериофаги представлены в растущее разнообразие вирусов окружающей среды, поражающих Возникновение фитопатогена. Дикейя солани. Фронт микробиол. 2018; 9:1–15. doi: 10.3389/fmicb.2018.02169. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Чайковский Р., Озимко З., Лойковска Е. Выделение и характеристика новых почвенных литические бактериофаги, инфицирующие Dickeya spp. биовар 3 (‘D. solani’) растение патол. 2014;63(4):758–772. doi: 10.1111/ppa.2014.63.issue-410.1111/ppa.12157. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]
50. Дэй А., Ан Дж., Фанг Х., Салмонд Г.П.К. Экологические бактериофаги возникающих
энтеробактериальный фитопатоген, dickeya solani, показать геномный
сохранение и способность к горизонтальному переносу генов между
их бактериальные хозяева.
Фронт микробиол. 2017; 8:1–9. doi: 10.3389/fmicb.2017.01654. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. Czajkowski R., Ozymko Z., Zwirowski S., Lojkowska E. Полная последовательность генома литического вируса широкого круга хозяев Диккея spp. бактериофаг ϕD5. Арх Вирол. 2014;159(11): 3153–3155. doi: 10.1007/s00705-014-2170-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Чайковский Р., Озимко З., Де Ягер В., Сивинска Дж., Смоларская А., Оссовицкий А. и соавт. Геномные, протеомные и морфологические характеристика двух новых литических бактериофагов широкого хозяина PdblPD10.3 и PdblPD23.1, заражающий пектинолитические Pectobacterium spp. и Диккея виды PLoS One 2015;10. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0119812. [Статья PMC бесплатно] [PubMed]
53. Карстенс А., Джурхуус А., Кот В., Джейкобс-Сера Д., Хатфулл Г., Хансен Л. Раскрытие потенциала 46 новых бактериофагов для
биоконтроль Dickeya Solani. Вирусы. 2018;10(11):621. дои: 10.
3390/v10110621. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
54. Кнехт Л.Е., Велькович М., Физелер Л. Разнообразие и функции кодируемых фагов Деполимеразы. Фронт микробиол. 2020; 10:1–16. doi: 10.3389/fmicb.2019.02949. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
55. Oliveira H., Costa A.R., Konstantinides N., Ferreira A., Akturk E., Sillankorva S. Способность фагов инфицировать Acinetobacter комплексные виды calcoaceticus-Acinetobacter baumannii через приобретение различных деполимераз пектатлиазы домены. Окружающая среда микробиол. 2017;19: 5060–5077. дои: 10.1111/1462-2920.13970. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
56. Oliveira H., Pinto G., Mendes B., Dias O., Hendrix H., Akturk E. Tailspike с EPS-деполимеразной активностью, кодируемой фаг, принадлежащий к новому роду, делает Providencia stuartii чувствительны к сывороточному умерщвлению. Appl Environ Microbiol. 2020 г.: 10.1128/aem.00073-20. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
57.
Curd H., Liu D., Reeves P.R. Отношения между кластерами генов О-антигена
Salmonella enterica группы B, D1, D2 и D3. J Бактериол. 1998;180(4):1002–1007. doi: 10.1128/JB.180.4.1002-1007.1998. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
58. Wollin R., Eriksson U., Lindberg A.A. Гликаназы бактериофага сальмонеллы: эндорамнозидаза Активность бактериофагов P27, 9NA и KB1. Дж Вирол. 1981;38(3):1025–1033. doi: 10.1128/jvi.38.3.1025-1033.1981. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
59. Kintz E., Davies M.R., Hammarlöf D.L., Canals R., Hinton JCD, van der Woude M.W. Salmonella определяет состав и длину О-антигена липополисахарид. Мол микробиол. 2015;96(2):263–275. doi: 10.1111/mmi.2015.96.issue-210.1111/mmi.12933. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
60. Duc HM, Son HM, Yi HPS, Sato J., Ngan PH, Masuda Y. Выделение, характеристика и применение
поливалентный фаг, способный контролировать Salmonella и
Escherichia coli O157:H7 в разных продуктах питания
матрицы.
Фуд Рез Инт. 2020;131:108977. doi: 10.1016/j.foodres.2020.108977. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
61. Луна А.Дж., Вуд Т.Л., Чамакура К.Р., Кути Эверетт Г.Ф. Полный геном серовара Salmonella enterica Enteritidis миофаг Маршалла. Объявление генома. 2013; 1:3–4. doi: 10.1128/genomeA.00867-13. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
62. Чамбли Дж., Цзэн С., О’Лири С.Дж., Гилл Дж.Дж., Лю М., Деннехи Дж.Дж. Полная последовательность генома Salmonella enterica Серовар Enteritidis Myophage Mooltan. Microbiol Resour объявляет. 2019;8(17) doi: 10.1128/MRA.00187-19. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
63. Лю Б., Книрель Ю.А., Фенг Лю., Перепелов А.В., Сенченкова С.Н., Ривз П.Р. Структурное разнообразие О-антигенов сальмонеллы и его генетическая основа. FEMS Microbiol Rev. 2014;38(1):56–89. дои: 10.1111/1574-6976.12034. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
64. Pan Y.-J., Lin T.-L., Chen C.-T., Chen Y.-Y., Hsieh P.-F.
, Hsu К.-Р. Генетический анализ синтеза капсульных полисахаридов
кластеры генов в 79 капсульных типах клебсиеллы
виды Научный доклад 2015; 5 (1) doi: 10.1038/srep15573. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
65. Прохоров Н.С., Риччио К., Здоровенко Е.Л., Шнейдер М.М., Браунинг С., Книрель Ю.А. Функция хвостового шипа эстеразы бактериофага G7C в Адсорбция клетки-хозяина. Мол микробиол. 2017;105(3):385–398. doi: 10.1111/mmi.2017.105.issue-310.1111/mmi.13710. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
66. Ту Дж., Парк Т., Морадо Д.Р., Хьюз К.Т., Молинью И.Дж., Лю Дж. Специфичность фага SP6 к двум хозяевам облегчается вращение хвостовика. Вирусология. 2017; 507: 206–215. doi: 10.1016/j.virol.2017.04.017. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
67. Латка А., Мацеевска Б., Майковска-Скробек Г., Брайерс Ю., Друлис-Кава З. Кодируемые бактериофагом ферменты, ассоциированные с вирионами, для
преодоление углеводного барьера при инфекции
процесс.
Приложение Microbiol Biotechnol. 2017;101(8):3103–3119. doi: 10.1007/s00253-017-8224-6. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
68. Stummeyer K., Schwarzer D., Claus H., Vogel U., Gerardy-Schahn R., Muhlenhoff M. Эволюция бактериофагов, заражающих инкапсулированные бактерии: уроки Escherichia coli, специфичные для K1 фаги. Мол микробиол. 2006;60(5):1123–1135. doi: 10.1111/mmi.2006.60.issue-510.1111/j.1365-2958.2006.05173.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
69. Альгрен Н.А., Рен Дж., Лу Ю.Ю., Фурман Дж.А., Сан Ф. Частота олигонуклеотидов d2∗ без выравнивания мера несходства улучшает предсказание хостов из метагеномно полученные вирусные последовательности. Нуклеиновые Кислоты Res. 2017;45:39–53. doi: 10.1093/nar/gkw1002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
70. Villarroel J., Kleinheinz K., Jurtz V., Zschach H., Lund O., Nielsen M. HostPhinder: Предсказание фагового хозяина
инструмент. Вирусы. 2016;8(5):116. doi: 10.
3390/v8050116. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
71. Leite D.M.C., Brochet X., Resch G., Que Y.-A., Neves A., Peña-Reyes C. Вычислительное прогнозирование -разновидность отношения с помощью анализа данных omics и машинного обучение. БМК Биоинф. 2018;19(S14) doi: 10.1186/s12859-018-2388-7. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
72. Boeckaerts D., Stock M., Criel B., Gerstmans H., De Baets B., Briers Y. Прогнозирование хозяев бактериофагов на основе последовательностей аннотированные рецептор-связывающие белки. Научный доклад 2021; 11 (1) doi: 10.1038/s41598-021-81063-4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Магазин доисторических планет — Реплики окаменелостей, включая динозавров, таких как T. rex, Triceratops и других!
Ursus spelaeus, череп пещерного медведя и нижняя челюсть $399.00
Велоцираптор рубящий и убивающий коготь 12,00 $
Массивный зуб мегалодона (Carcharodon megalodon) размером 6 7/8 дюйма, черный
$60.
00
2022 Morgantown Gem, Mineral & Fossil Show, 27-28 августа 2022
Смесь зубов ископаемой акулы, коробка 6,00 $
Смесь зубов настоящей ископаемой акулы (оптом 1 фунт) $20.00
Ознакомьтесь с нашей новой продукцией бренда Prehistoric Planet, включая футболки с эксклюзивным доисторическим дизайном!
Посмотреть магазин товаров
Примечание. Корзина магазина товаров отделена от корзины магазина доисторической планеты.
Загрузить полный каталог (3MB PDF)
БОЛЕЕ 260 СТРАНИЦ РЕПЛИК И БОЛЬШЕ!
Лайкните нас на Facebook
Геологоразведочный музей ЗВ
SMART Center Market | СМАРТ на Facebook
Потеряно World Caverns
Встречи с динозаврами
Detroit Gem, Mineral, Fossil & Jewelry Show
Warren, Michigan – 11-13 октября 2019 г.
http://www.michmin.org/show/
День рождения Дарвина
12 февраля
NY / NJ Mineral, Fossil, Gem & Jewelry Show
NJ Conference & Экспоцентр, Эдисон, Нью-Джерси – 15–19 апреля 2020 г.
http://www.ny-nj-gemshow.com/index.php
http://www.ny-nj-gemshow.com/show_details.php
National Fossil Exposition, MAPS
Sharpless Auction Facility, Iowa City, Iowa – 17–19 апреля 2020 г.
http://www.midamericapaleo.org/
Выставка драгоценных камней, минералов и ископаемых в Моргантауне
Центр готовности Национальной гвардии, Моргантаун, Западная Вирджиния, 21-22 сентября 2019 г. — 330.998.7015
http://www.prehistoricstore.com/item.php?item=1580
Dinosaur Safari Digs
Монтана, Северная Дакота, Южная Дакота, Небраска � Еженедельно с июня по июль Контактное лицо: д-р Стив Никлас 678/316-4983
http://www.paleoprospectors.com
mailto:[email protected]
West Virginia Fossil Club
Clarksburg, WV � 1-я пятница каждого месяца
http://prehistoricplanet.com/wvfc/
Ярмарка штата Западная Вирджиния, посетите стенд «Пещеры Затерянного мира»
Льюисбург, Западная Вирджиния – 8–1 августа 2018 г.