Керапластика волос Екатеринбург | салон Атмосфера Красоты
Этапы выполнения процедуры керапластики
Вся процедура насыщения волос проходит в несколько этапов. Первых из них заключается очищении волос. Стоит заметить, что это косметическое средство не должно содержать сульфатов.
Второй этап – нанесение средства на проблемные волосы. Для этого необходим ампульный концентрат. Именно он и насыщает волосы недостающим кератином. Благодаря ним можно законсервировать чистый кератин без негативного воздействия на него. Такие ампулы не вызывают аллергических реакций у человека.
После нанесения кератина на волосы, по волосам проходятся специальным ультразвуковым утюжком, который загоняет питательные вещества глубоко в волос и закаивает инфрокрасным излучением кутикулу.
Третий этап предусматривает нанесение на волосы специальной маски. Она поможет кератину как можно лучше закрепиться на локонах. К тому же, такая маска способствует лучшему впитыванию белка волосами.
Четвертый этап является заключительным. На волосы наносится специальный кондиционер, который закрепляет эффект от воздействия кератина.
Процедура керапластики не является одноразовой. Для достижения лучшего эффекта рекомендуется проводить еще как можно чаще, предусматривая месячные перерывы. То есть, керапластику необходимо совершать один раз в четыре недели.
Положительные стороны керапластики
Керапластика имеет массу положительных сторон, благодаря которым процедура и получила свою популярность. Ведь с ее помощью можно:
-
улучшить внешний вид волос;
-
укрепить структуру каждого волоса изнутри;
-
насытить локоны недостающими элементами;
-
вернуть объем своей прическе.
Противопоказания и побочные эффекты от проведения керапластики
Что же касается противопоказаний и побочных эффектов от проведения процедуры керапластики, то на сегодняшний день их не наблюдалось.
Все средства, которые применяются для такого восстановления волос, состоят только из природных компонентов. Практически их же вырабатывает сам человек. Керапластика просто добавляет волосам недостающие элементы, когда организм по определенным причинам не может создавать их самостоятельно.
Ультразвуковая керапластика KeratinLiss, Maraes
|
|
Без укладки |
|
Короткая длина (по ½ с каждой ампулы) |
1200 |
|
Средняя длина (по 1 ампуле) |
2000 |
|
Средние густые волосы ( по 1 ½ ампуле) |
2400 |
|
Длинные волосы ( по 2 ампулы) |
2800 |
|
Длинные густые волосы ( по 3 ампулы) |
3500 |
Рекомендуемый курс лечения 3-5 процедур каждые 3-4 недели
Длительность процедуры 1 – 1,5 часа
— Читайте подробнее на FB.
— Читайте подробнее на FB.ru: http://fb.ru/article/247930/keraplastika-volos-opisanie-protseduryi-proizvoditeli-effektivnost-i-otzyivyi
Зачем применяется керапластика волос? Как это ни печально, но с возрастом волосы на голове начинают всё быстрее выпадать, они становятся излишне ломкими и теряют свой естественный блеск и цвет. Причин происходящего несколько. Во-первых это воздействие негативных внешних факторов в виде солнечного света, сильного ветра и низкой температуры. Вторым фактором чаще всего выступают различные химические процедуры с волосами, наиболее сильное повреждение пряди получают во время осветлений, завивок, окрашиваний или температурного воздействия от фенов и плоек. Всё это делается шевелюру ломкой, волосы начинают выпадать, а это, в свою очередь, может привести к полному или частичному облысению. — Читайте подробнее на FB.ru: http://fb.ru/article/247930/keraplastika-volos-opisanie-protseduryi-proizvoditeli-effektivnost-i-otzyivyi
Шампунь-филлер для волос Керапластика волос «Сила гиалурона» Белита
Смотреть 1741 товар: Шампунь для волосУход Для волос Средство для блеска волос Шампунь для волос
Белита — Витекс
Шампунь-филлер для волос Керапластика волос
+
+ Характеристики товара Нашли ошибку в описании?Описание
Характеристики
Решаем проблему:
От секущихся кончиков / Против ломкости / Против сечения
Тип волос:
Для поврежденных / Для секущихся / Для ломких / Для тусклых
Эффект:
Для восстановления / Для блеска / Мягкость волос / Очищение / Эластичность / Для гладкости
Пол и возраст:
Женский
Свойства:
Бессульфатный
95 покупателей рекомендуют приобрести
195 раз добавили в список желаний
Способ применения
Нанесите шампунь на влажные волосы, вспеньте массажными движениями, тщательно промойте водой.
Для достижения максимального результата, рекомендуется применять совместно с бальзамом-филлером «Запечатывание волос и секущихся кончиков».
Активные компоненты / состав
Вода, лауретсульфат натрия, кокамидопропилбетаин, хлорид натрия, кокамид MIPA, лаурет-4, ПЭГ-7 глицерилкокоат, лауроилсаркозинат натрия, гликольдистеарат, лаурет-4, кокамидопропилбетаин, поликватерниум-22, парфюмерная композиция, хлорид гуаргидроксипропилтримония, бензиловый спирт, метилхлоризотиазолинон, метилизотиазолинон, гидролизованный протеин сои, гидролизованный протеин кукурузы, гидролизованный протеин.
Гарантия и возвратОтзывыВверх
Механотрансдуктивная дифференциация стволовых клеток волосяных фолликулов, полученных из стареющей кожи век, в эндотелиоподобные клетки роговицы
. 2022 Июн; 18(5):1668-1685. doi: 10.1007/s12015-021-10249-0. Epub 2021 13 сентября.
Кристиан Ольшевски # 1 , Джессика Маассен # 1 , Ребекка Гюнтер 1 , Клаудия Сказик-Вогт 1 , Анжела Гутермут 2
Принадлежности
- 1 Институт производственных технологий Фраунгофера, Steinbachstraße 17, 52074, Ахен, Германия.
- 2 Институт производственных технологий Фраунгофера, Steinbachstraße 17, 52074, Ахен, Германия. [email protected].
# Внесли поровну.
- PMID: 34515937
- PMCID: PMC9209348
- DOI:
10.
1007/s12015-021-10249-0
1007/s12015-021-10249-0Кристиан Ольшевски и соавт. Стволовые клетки Rev Rep. 2022 июнь
Бесплатная статья ЧВК . 2022 Июн; 18(5):1668-1685. doi: 10.1007/s12015-021-10249-0. Epub 2021 13 сентября.Авторы
Кристиан Ольшевски # 1 , Джессика Маассен # 1 , Ребекка Гюнтер 1 , Клаудия Сказик-Вогт 1 , Анжела Гутермут 2
Принадлежности
- 1 Институт производственных технологий Фраунгофера, Steinbachstraße 17, 52074, Ахен, Германия.
- 2 Институт производственных технологий Фраунгофера, Steinbachstraße 17, 52074, Ахен, Германия. [email protected].
# Внесли поровну.
- PMID: 34515937
- PMCID: PMC9209348
- DOI: 10.1007/s12015-021-10249-0
Абстрактный
Эндотелиальная недостаточность роговицы является одной из ведущих причин слепоты. Основным современным методом лечения роговичной слепоты является эндотелиальная кератопластика, которая, однако, в качестве медикаментозного лечения неудовлетворительна из-за отсутствия донорских роговиц и отторжения трансплантата.
Таким образом, аутологичные заменители эндотелиальной ткани роговицы на основе стволовых клеток могут стать многообещающей альтернативой традиционным трансплантатам в будущем. Чтобы учесть возраст большинства пациентов, страдающих дефицитом эндотелия роговицы, мы исследовали наличие и потенциал стволовых клеток, полученных из волос, от доноров тканей старшего возраста. Наши исследования выявили наличие маркеров, ассоциированных с плюрипотентностью и нервным гребнем, в срезах тканей пациентов в возрасте от 50 до 80 лет, перенесших блефаропластику. In vitro ростки волосяных фолликулов век на планшетах для культур тканей, покрытых коллагеном, выявили слабое снижение активности стволовых клеток. Напротив, клетки внутри сфер, которые спонтанно образовались из слоя адгезивных клеток, сохраняли полную активность стволовых клеток и могли дифференцироваться в клетки эктомезо- и энтодермального клонов. Хотя эти сильнодействующие стволовые клетки, полученные из волосяных фолликулов (HFSC), были лишь очень слабо размножаемыми, они были способны распознавать биомимикрию десцеметоподобной топографии и дифференцироваться в эндотелиоподобные клетки роговицы.
В заключение, HFSC, полученные из биоптатов эпидермиса кожи век, являются многообещающим источником клеток для обеспечения аутологичной замены эндотелия роговицы для любой возрастной группы пациентов.
Ключевые слова: Эндотелиоподобные клетки роговицы; стволовые клетки волосяных фолликулов; механотрансдукция; Стволовые клетки нервного гребня.
© 2021. Автор(ы).
Заявление о конфликте интересов
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Цифры
Рис. 1
Окрашивание тканей век…
Рис. 1
Окрашивание срезов тканей век.
А) Срезы тканей век окрашивали…
Окрашивание срезов тканей век. А) Срезы ткани век окрашивали гематоксилином/эозином (HE). На фото здесь волосяной фолликул чуть ниже поверхности эпидермиса. Масштабные полосы показывают 200 мкм. B) Срезы ткани окрашивали флуоресцентно мечеными антителами, чтобы показать экспрессию маркеров плюрипотентности и нервного гребня в ткани века. Масштабные линейки отображают 50 мкм
Рис. 2
Клетки области выпуклости волосяного фолликула…
Рис. 2
Клетки области выпуклости волосяного фолликула в культуре клеток. а) Клетки волосяных фолликулов были…
Рис. 2 Клетки области выпуклости волосяного фолликула в культуре клеток. а) Клетки волосяных фолликулов выделяли из кожи век и культивировали на посуде для культивирования тканей, покрытой коллагеном I.
б) Стволовые клетки волосяных фолликулов образуют круглые колонии. в) В некоторых колониях можно наблюдать образование шаров. d) Люминесцентные сферы диаметром от 100 до 200 мкм были взяты для характеристики или дифференциации. Масштабная линейка каждого изображения показывает 200 мкм
Рис. 3
Анализ экспрессии белков HFSC…
Рис. 3
Анализ экспрессии белков в сферах HFSC и прикрепленных клетках? Приверженец HFSC и новые…
Рис. 3 Анализ экспрессии белков в сферах HFSC и прикрепленных клетках? Адгезивные HFSC и появляющиеся сферы окрашивались типичными маркерами плюрипотентности и нервного гребня. За исключением Nanog, OCT-4 и ZO-1 как прилипшие клетки, так и сферы окрашивались положительно на SOX-2, SSEA-4, Tra-1–60, CD271, нестин, ZO-1 и коннексин. Ядра окрашивали DAPI (изотипический контроль см.
в дополнительных данных). Масштабные полосы представляют 50 мкм
Рис. 4
Сравнение активности стволовых клеток…
Рис. 4
Сравнение экспрессии генов, ассоциированной с активностью стволовых клеток, между сферическими и прикрепленными клетками…
Рис. 4 Сравнение экспрессии генов, ассоциированной с активностью стволовых клеток, между сферическими и прикрепленными клетками. Относительную нормализованную экспрессию генов Nanog, POU5F1, SOX-2 и KlF4 исследовали для трехмерных сфер по сравнению с одиночными прикрепленными клетками. Данные экспрессии генов были нормализованы с использованием генов домашнего хозяйства GAPDH и B2M. Столбики погрешностей представляют собой три повтора. Значимость по сравнению с контролем была проанализирована с помощью одностороннего анова-тестирования.
* указывает p < 0,05, ** означает p < 0,01 и *** означает p < 0,001
Рис. 5
Экто-, мезо- и энтодермальная дифференцировка…
Рис. 5
Потенциал экто-, мезо- и энтодермальной дифференцировки адгезивных и сферических HFSC . Дифференциация…
Рис. 5Потенциал экто-, мезо- и энтодермальной дифференцировки адгезивных и сферических HFSC . Дифференцировку индуцировали с помощью набора StemMACS™ Trilineage Differentiation. Адгезивные клетки (А) и рост сферических клеток (В) культивировали в среде, индуцирующей дифференцировку, в течение шести дней в соответствии с инструкциями производителя. Начиная с третьего дня культивирования в клетках наблюдалась измененная клеточная морфология. Белые шкалы показывают 200 мкм, а черные шкалы – 50 мкм
Рис.
6
Оценка экто- и эндо-…
Рис. 6
Оценка экто-, эндо- и мезодермальной дифференцировки прилипших СКВФ методом иммунофлуоресценции.…
Рис. 6 Оценка экто-, эндо- и мезодермальной дифференцировки прилипших HFSC методом иммунофлуоресценции. После шести дней культивирования в среде для дифференцировки клетки фиксировали и окрашивали на экто-, эндо- и мезодермальные специфические маркеры клеток-предшественников. Показаны примерные результаты прилипшей клеточной культуры. Дифференцировку эктодермальных клеток-предшественников оценивали по экспрессии Sox2, Pax6, Synaptophysin и NEFL. Sox17 и CXCR4 использовали для идентификации энтодермальных клеток-предшественников. Окрашивание M-кадгерина и MCAM, а также PDGFR β и VE-кадгерина выполняли для идентификации мезодермальных клеток-предшественников. Окрашивание ядер проводили с помощью DAPI.
Масштабные полосы показывают 50 мкм
Рис. 7
Полидиметилсилоксан «Негатив» с десцеметовой микротопографией…
Рис. 7
Полидиметилсилоксан «Негатив» с десцеметовой микротопографией формовали в коллагене и использовали для дифференциации…
Рис. 7Полидиметилсилоксан «Негатив» с десцеметовой микротопографией формовали в коллагене и использовали в качестве индуктора дифференцировки для HFSC. A) CLSM-изображение PDMS с отпечатком десцеметовой топографии (DLT), показывающее шестиугольные возвышения. B) Перенос DLT на коллагеновую мембрану. Масштабная линейка указывает 50 мкм. C) Профиль линии вдоль синей линии на изображении CLSM (A), который иллюстрирует ширину и высоту шестиугольных возвышений
Рис.
8
а) Сферы HFSC были засеяны…
Рис. 8
а) Сферы ВПСЦ были засеяны на поверхность коллагена, отпечатанную ДЛТ, и началось…
Рис. 8а) Сферы HFSC были высеяны на поверхность коллагена с отпечатком DLT, и они начали расти после 24 часов культивирования, шкала представляет собой 100 мкм. б) через ок. 14 дней, поверхность была полностью покрыта переросшими HFSC, шкала соответствует 50 мкм. в) Клетки внутри клеточного слоя приобретают многоугольную/гексагональную форму через ок. 20 дней культивирования, шкала соответствует 50 мкм. d) Адгезивные HFSC высевали на сформованный из DLT коллаген в концентрации 3000 клеток/мм 9 .0007 2 , масштабная линейка соответствует 100 мкм . e) Через 7 дней культивирования клетки показали гексагональную морфологию, и представлена небольшая площадь, увеличенная в 4,5 раза. Масштабная линейка соответствует 100 мкм
Рис.
9
Ген, ассоциированный с эндотелиальными клетками роговицы…
Рис. 9
Эндотелиальные клетки роговицы, ассоциированные с экспрессией генов дифференцированных адгезивных и сферических HFSC. Анализ…
Рис. 9 Экспрессия генов, ассоциированных с эндотелиальными клетками роговицы, дифференцированных адгезивных и сферических HFSC. Анализ относительно нормализованной экспрессии генов АТФазы, ZO-1, COL8 и PITX2. A) Адгезивные HFSC пассажа 1 высевали на коллаген с отпечатком DLT в плотности 3000 клеток/мм 2 и культивировали в течение семи дней. Данные экспрессии генов были нормализованы с использованием генов домашнего хозяйства GAPDH и B2M. Столбики погрешностей представляют собой три повтора. Относительную активацию генов оценивали по сравнению с клетками Jurkat в качестве контроля, культивируемого на чашках для тканевых культур с плотностью посева 1000 клеток/см 2 .
B) Сферический отросток HFSC высевали на коллагеновую мембрану с DLT и культивировали в течение 21 дня. Относительную активацию гена оценивали по сравнению с клетками Jurkat в качестве контроля, культивируемого на чашках для тканевых культур с плотностью посева 1000 клеток/см 2 . Значимость по сравнению с контролем была проанализирована для A) и B) с помощью одностороннего анава-тестирования. * указывает p < 0,05, ** указывает p < 0,01 и *** указывает p < 0,001. C) Иммунофлуоресцентный анализ проводили для измерения маркерной экспрессии PITX, Na/K-АТФазы, Col-8 и ZO-1. Клетки, выращенные в сфере, культивировали на коллагене DLT в течение 14 дней. Для окрашивания антителами отдельные клетки соскабливали с каркаса из коллагена I. Ядра окрашивали DAPI. Масштабные полосы показывают 50 мкм
Рис. 10
Функциональный анализ дифференцированных ВПС…
Рис.
10
Функциональный анализ дифференцированных ВПС по разности потенциалов. А) Коллагеновые мембраны, засеянные…
Рис. 10 Функциональный анализ дифференцированных ВПС по разности потенциалов. A) Коллагеновые мембраны, засеянные HFSC в течение 24 дней, переносили в систему культивирования Transwell® с мембраной, пористой для ионов натрия и калия. Разность потенциалов между верхним и нижним отсеками измеряли и нормализовали к эталонному измерению, состоящему только из вставки Transwell®. Зеленая линия указывает на коллагеновую мембрану, засеянную 3000 клеток на мм 2 на десцеметоподобной топографии (DLT), в то время как красная линия указывает на коллагеновую мембрану, засеянную 5000 клетками на мм 2 на неструктурированном контрольном коллагене. Пунктирные линии показывают нелинейные кривые полиномиальной регрессии шестого порядка. Отображается среднее значение 540 измерений в минуту.
B) Возможная разница между DLT и контрольным коллагеном при промывании дистиллированной водой. После первого измерения, как показано на (A), коллагеновые мембраны инкубировали при 37 °C в течение 12 часов для достижения определенного равновесия между двумя отсеками. После инкубации клетки промывали дистиллированной водой в течение 16 мин и 40 с. Движение ионов наружу в нижнее отделение приводит к отрицательной разности потенциалов. Культивируемые клетки DLT на коллагене вызывали снижение движения ионов, что приводило к меньшему отрицательному потенциалу. C) Измерение разности потенциалов после 12 ч инкубации и промывки. После промывки дистиллированную воду заменяли на среду для дифференциации и снова измеряли разность потенциалов в течение 150 мин. Разность потенциалов для клеток, культивируемых на коллагеновой мембране со структурой DLT, начиналась на уровне + 40 мВ, но в конечном итоге стабилизировалась после первоначального снижения примерно на уровне + 25 мВ после 30-минутной инкубации.
Контрольный коллаген оставался стабильным, как это наблюдалось ранее при первом измерении (см. рис. А), но значение колебалось в пределах от -10 до -15 мВ
См. это изображение и информацию об авторских правах в PMC
Похожие статьи
- Выделение и культивирование стволовых клеток нервного гребня из волосяных фолликулов человека.
Ян Р, Сюй С. Ян Р и др. J Vis Exp. 2013 6 апр;(74):3194. дои: 10.3791/3194. J Vis Exp. 2013. PMID: 23608752 Бесплатная статья ЧВК.
- [Трансплантация эндотелиальных клеток роговицы].
Амано С. Амано С. Ниппон Ганка Гаккай Засси. 2002 декабрь; 106 (12): 805-35; обсуждение 836. Ниппон Ганка Гаккай Засси. 2002. PMID: 12610838 Обзор. Японский язык.
- Предшественники кожного происхождения как источник предшественников для регенерации эндотелия роговицы.
Инагаки Э., Хато С., Хига К., Ёсида С., Сибата С., Окано Х., Цубота К., Шиммура С. Инагаки Э. и др. Стволовые клетки Transl Med. 2017 март; 6 (3): 788-798. doi: 10.1002/sctm.16-0162. Epub 2017 6 февраля. Стволовые клетки Transl Med. 2017. PMID: 28186681 Бесплатная статья ЧВК.
- От волос до роговицы: к терапевтическому использованию стволовых клеток, полученных из волосяных фолликулов, при лечении дефицита лимбальных стволовых клеток.
Мейер-Блазеевска Э.А., Звоните М.К., Яманака О., Лю Х., Шлетцер-Шрехардт У., Крузе Ф.Е., Као В.В. Meyer-Blazejewska EA, et al. Стволовые клетки. 2011 Январь; 29 (1): 57-66. doi: 10.1002/стел.550. Стволовые клетки. 2011. PMID: 20957740 Бесплатная статья ЧВК.
- Эндотелий роговицы: стратегии развития регенерации.
Zavala J, López Jaime GR, Rodríguez Barrientos CA, Valdez-Garcia J. Завала Дж. и др. Глаз (Лонд). 2013 Май; 27 (5): 579-88. doi: 10.1038/eye.2013.15. Epub 2013 8 марта. Глаз (Лонд). 2013. PMID: 23470788 Бесплатная статья ЧВК. Обзор.
Посмотреть все похожие статьи
Рекомендации
- Дельмонте Д.В., Ким Т. Анатомия и физиология роговицы. Журнал катаракты и рефракционной хирургии. 2011; 37: 588–598. doi: 10.1016/j.jcrs.2010.12.037. — DOI — пабмед
- Прайс МО, Томпсон РВ, Прайс FW. Факторы риска для различных причин неудачи первоначальных трансплантатов роговицы. Архив офтальмологии. 2003; 121:1087–1092. doi: 10.1001/архофт.121.8.1087.
—
DOI
—
пабмед
- Прайс МО, Томпсон РВ, Прайс FW.
- Эграри А.О., Риазуддин С.А., Готтш Ю.Д. Дистрофия роговицы Фукса. Прогресс в молекулярной биологии и трансляционной науке. 2015; 134:79–97. doi: 10.1016/bs.pmbts.2015.04.005. — DOI — пабмед
- Хань Ф. , Ли Дж., Чжао С. и др. Распределение и анализ внутриглазного давления и его возможная связь с глаукомой у детей. Международная офтальмология. 2021;41:2817–2825. doi: 10.1007/s10792-021-01838-6.
—
DOI
—
пабмед
- Хань Ф.
- Ю А.Л., Кайзер М., Шамбергер М. и соавт. Факторы риска, связанные с донором, и предоперационные факторы риска, связанные с реципиентом, для отказа трансплантата. Роговица. 2014; 33:1149–1156. doi: 10.1097/ICO.0000000000000225. — DOI — пабмед
Факторы риска для различных причин неудачи первоначальных трансплантатов роговицы. Архив офтальмологии. 2003; 121:1087–1092. doi: 10.1001/архофт.121.8.1087.
—
DOI
—
пабмед
, Ли Дж., Чжао С. и др. Распределение и анализ внутриглазного давления и его возможная связь с глаукомой у детей. Международная офтальмология. 2021;41:2817–2825. doi: 10.1007/s10792-021-01838-6.
—
DOI
—
пабмедТипы публикаций
термины MeSH
Современные методы послойной кератопластики при кератоконусе
1.
Jhanji V, Sharma N, Vajpayee RB. Лечение кератоконуса: текущий сценарий. Бр Дж Офтальмол. 2011;95:1044–1050. [PubMed] [Google Scholar]
2. Spadea L, Bianco G, Mastrofini MC, Balestrazzi E. Сквозная кератопластика с донорской и реципиентной роговицами одинакового диаметра. Офтальмологические хирургические лазеры. 1996;27:425–430. [PubMed] [Google Scholar]
3. Аренас Э., Эскенази С., Анвар М., Терри М. Ламеллярная трансплантация роговицы. Сурв Офтальмол. 2012; 57: 510–529. [PubMed] [Google Scholar]
4. Чжан Ю.М., Ву С.К., Яо Ю.Ф. Долгосрочное сравнение глубокой передней пластинчатой кератопластики и сквозной кератопластики при лечении кератоконуса. J Zhejiang Univ Sci B. 2013; 14: 438–450. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
5. Coster DJ, Lowe MT, Keane MC, Williams KA. Участники Австралийского реестра трансплантатов роговицы. Сравнение результатов послойной и сквозной кератопластики: регистрационное исследование. Офтальмология. 2014;121:978–987.
[PubMed] [Google Scholar]
6. Рейнхарт В.Дж., Муш Д.К., Джейкобс Д.С., Ли В.Б., Кауфман С., Штейн Р.М. Глубокая передняя послойная кератопластика как альтернатива сквозной кератопластике, доклад американской академии офтальмологии. Офтальмология. 2011; 118: 209–218. [PubMed] [Google Scholar]
7. Fasolo A, Frigo AC, Böhm E, Genisi C, Rama P, Spadea L, et al. Исследование CORTES: показания к пересадке роговицы и выживаемость трансплантата у итальянской когорты пациентов. Роговица. 2006; 25: 507–515. [PubMed] [Академия Google]
8. Liu H, Chen Y, Wang P, Li B, Wang W, Su Y, et al. Эффективность и безопасность глубокой передней пластинчатой кератопластики по сравнению со сквозной кератопластикой при кератоконусе: метаанализ. ПЛОС Один. 2015;10:e0113332. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
9. Abdelkader A. Влияние различных методов кератопластики на биомеханические свойства роговицы. Акта Офтальмол. 2013; 91:e567–e572. [PubMed] [Google Scholar]
10.
Tan DT, Ang LP. Автоматизированная ламеллярная терапевтическая кератопластика для рубцевания и истончения роговицы после ФРК. Am J Офтальмол. 2004; 138:1067–1069.. [PubMed] [Google Scholar]
11. Jiménez-Alfaro I, Pérez-Santonja JJ, Gómez Tellería G, Bueno Palacín JL, Puy P. Терапевтическая пластинчатая кератопластика с помощью автоматизированного микрокератома. J Катаракта рефракта Surg. 2001; 27:1161–1165. [PubMed] [Google Scholar]
12. Tan DTH, Ang LP. Модифицированная автоматизированная послойная терапевтическая кератопластика при кератоконусе: новая методика. Роговица. 2006; 25:1217–1219. [PubMed] [Google Scholar]
13. Акар Б.Т., Арслан О.С., Буттанри И.Б., Севим М.С., Акар С. Сравнение глубокой передней пластинчатой кератопластики и автоматизированной пластинчатой терапевтической кератопластики у пациентов с кератоконусом. Jpn J Офтальмол. 2011;55:327–332. [PubMed] [Академия Google]
14. Билгихан К., Оздек С.К., Сари А., Хасанрейсоглу Б. Послойная кератопластика с помощью микрокератома при кератоконусе: стромальный сэндвич.
J Катаракта рефракта Surg. 2003; 29: 1267–1272. [PubMed] [Google Scholar]
15. Busin M, Zambianchi L, Arffa RC. Послойная кератопластика с микрокератомом в хирургическом лечении кератоконуса. Офтальмология. 2005; 112:987–997. [PubMed] [Google Scholar]
16. Busin M, Scorcia V, Zambianchi L, Ponzin D. Результаты модифицированной пластинчатой кератопластики с помощью микрокератома при кератоконусе. Арка Офтальмол. 2012; 130:776–782. [PubMed] [Академия Google]
17. Buratto L, Belloni S, Valeri R. Эксимерлазерная послойная кератопластика увеличенной толщины при кератоконусе. J преломление Surg. 1998; 14: 517–525. [PubMed] [Google Scholar]
18. Сердаревич О.Н., Ханна К., Грибомонт А.С., Савольделли М., Ренар Г., Пуликен Ю. Эксимерлазерная трепанация при сквозной кератопластике. Морфологические особенности и заживление ран. Офтальмология. 1988; 95: 493–505. [PubMed] [Google Scholar]
19. Kubota T, Seitz B, Tetsumoto K, Naumann GO. Пластинчатая эксимерлазерная кератопластика: воспроизводимая фотоаблация ткани роговицы.
Лабораторное исследование. Док Офтальмол. 1992;82:193–200. [PubMed] [Google Scholar]
20. Bilgihan K, Ozdek SC, Sari A, Hasanreisoğlu B. Передняя послойная кератопластика с помощью эксимерного лазера при кератоконусе, проблемах роговицы после лазерного кератомилеза in situ и помутнениях стромы роговицы. J Катаракта рефракта Surg. 2006; 32: 1264–1269. [PubMed] [Google Scholar]
21. Spadea L, Giammaria D, Fiasca A, Verrecchia V. Послойная кератопластика с помощью эксимерного лазера для хирургического лечения кератоконуса. J Катаракта рефракта Surg. 2009 г.;35:105–112. [PubMed] [Google Scholar]
22. Spadea L, Gizzi R, Evangelista Conocchia N, Urbano S. Индивидуальная ламеллярная кератопластика с использованием эксимерного лазера под контролем оптической пахиметрии для хирургического лечения кератоконуса. J Катаракта рефракта Surg. 2012; 38: 1559–1567. [PubMed] [Google Scholar]
23. Spadea L. Кросслинкинг коллагена при эктазии после ФРК, выполненной при эксимерлазерной кератопластике при кератоконусе.
Eur J Офтальмол. 2012; 22: 274–277. [PubMed] [Академия Google]
24. Spadea L, Paroli M. Одновременная ФРК под контролем топографии с последующим перекрестным связыванием коллагена роговицы после послойной кератопластики по поводу кератоконуса. Клин Офтальмол. 2012; 6: 1793–1800. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
25. Hou P, Lu Y, Ye F, Lan W, Huang Z. Применение фемтосекундного лазера в глазной хирургии. наук о глазах. 2013; 28:103–107. [PubMed] [Google Scholar]
26. Фарид М., Штайнерт РФ. Хирургия роговицы с помощью фемтосекундного лазера. Карр Опин Офтахальмол. 2010; 21: 288–29.2. [PubMed] [Google Scholar]
27. Джонс Ю.Дж., Гоинс К.М., Сатфин Дж.Е., Маллинз Р., Скейе Дж.М. Сравнение фемтосекундного лазера (IntraLase) и ручного микрокератома (Moria ALTK) при диссекции донора при эндотелиальной кератопластике: первоначальное исследование глазных банков. Роговица. 2008; 27:88–93. [PubMed] [Google Scholar]
28. Альмуса Р., Самарас К.
Е., Хан С., Лейк Д.Б., Дайя С.М. Пластинчатая кератопластика с помощью фемтосекундного лазера (ФСЛК) при заболеваниях передней стромы роговицы. Инт офтальмол. 2014;34:49–58. [PubMed] [Google Scholar]
29. Фланаган Г.В., Биндер П.С. Точность измерений лоскутов при лазерном кератомилезе in situ на 4428 глазах. J преломление Surg. 2003; 19: 113–123. [PubMed] [Google Scholar]
30. Kezirian GM, Stonecipher KG. Сравнение фемтосекундного лазера IntraLase и механических кератомов для лазерного кератомилеза in situ. J Катаракта рефракта Surg. 2004; 30:804–811. [PubMed] [Google Scholar]
31. Биндер П.С. Размеры лоскута, созданные с помощью лазера IntraLase FS. J Катаракта рефракта Surg. 2004; 30: 26–32. [PubMed] [Академия Google]
32. Mosca L, Fasciani R, Tamburelli C, Buzzonetti L, Guccione L, Mandarà E, et al. Послойная кератопластика с помощью фемтосекундного лазера: первые результаты. Роговица. 2008; 27: 668–672. [PubMed] [Google Scholar]
33. Барадаран-Рафии А.
, Эслани М. Трансплантация роговицы с помощью фемтосекундного лазера. Бр Дж Офтальмол. 2013; 97: 675–676. [PubMed] [Google Scholar]
34. Hoffart L, Proust H, Matonti F, Catanèse M, Conrath J, Ridings B. [Фемтосекундная передняя пластинчатая кератопластика] J Fr Ophthalmol. 2007;30:689–694. Французский. [PubMed] [Google Scholar]
35. Hou P, Lu Y, Ye F, Lan W, Huang Z. Применение фемтосекундного лазера в глазной хирургии. наук о глазах. 2013; 28:103–107. [PubMed] [Google Scholar]
36. Шуша М.А., Ю С.Х., Кимионис Г.Д., Иде Т., Фейер В., Карп С.Л. и соавт. Отдаленные результаты фемтолазерной бесшовной передней послойной кератопластики. Офтальмология. 2011;118:315–323. [PubMed] [Google Scholar]
37. Yoo SH, Kymionis GD, Koreishi A, Ide T, Goldman D, Karp CL, et al. Бесшовная передняя послойная кератопластика с помощью фемтосекундного лазера. Офтальмология. 2008; 115:1303–1307. 1307.e1. [PubMed] [Академия Google]
38. Chan CC, Ritenour RJ, Kumar NL, Sansanayudh W, Rootman DS.
Глубокая передняя пластинчатая кератопластика грибовидной конфигурации с помощью фемтосекундного лазера. Роговица. 2010;29:290–295. [PubMed] [Google Scholar]
39. Анвар М. Метод диссекции в послойной кератопластике. Бр Дж Офтальмол. 1972; 56: 711–713. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
40. Sarnicola V, Toro P, Sarnicola C, Sarnicola E, Ruggiero A. Долгосрочная выживаемость трансплантата при глубокой передней пластинчатой кератопластике. Роговица. 2012; 31: 621–626. [PubMed] [Академия Google]
41. Sugita J, Kondo J. Глубокая пластинчатая кератопластика с полным удалением патологической стромы для улучшения зрения. Бр Дж Офтальмол. 1997; 81: 184–188. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
42. Marchini G, Mastropasqua L, Pedrotti E, Nubile M, Ciancaglini M, et al. Глубокая пластинчатая кератопластика путем интракорнеальной диссекции: проспективное клиническое и конфокальное микроскопическое исследование. Офтальмология. 2006; 113:1289–1300.
[PubMed] [Google Scholar]
43. Ardjomand N, Hau S, McAlister JC, Bunce C, Galaretta D, Tuft SJ, et al. Качество зрения и толщина трансплантата при глубоком переднем пластинчатом и проникающем аллотрансплантате роговицы. Am J Офтальмол. 2007; 143: 228–235. [PubMed] [Академия Google]
44. Rama P, Knutsson KA, Razzoli G, Matuska S, Viganò M, Paganoni G. Глубокая передняя пластинчатая кератопластика с использованием оригинальной ручной техники. Бр Дж Офтальмол. 2013;97:23–27. [PubMed] [Google Scholar]
45. Oh BL, Kim MK, Wee WR. Сравнение клинических результатов трансплантата одинакового размера при глубокой передней пластинчатой кератопластике и сквозной кератопластике при кератоконусе. Корейский J Офтальмол. 2013;27:322–330. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
46. Сарникола В., Торо П., Джентиле Д., Ханнуш С.Б. Десцеметический DALK и преддескеметический DALK: исходы в 236 случаях кератоконуса. Роговица. 2010;29: 53–59. [PubMed] [Google Scholar]
47.
Fontana L, Parente G, Sincich A, Tassinari G. Влияние интерфейса трансплантат-хозяин на качество зрения после глубокой передней пластинчатой кератопластики у пациентов с кератоконусом. Роговица. 2011;30:497–502. [PubMed] [Google Scholar]
48. Schiano-Lomoriello D, Colabelli-Gisoldi RA, Nubile M, Oddone F, Ducoli G, Villani CM, et al. Десцеметический и преддескеметический DALK у пациентов с кератоконусом: клиническое и конфокальное перспективное исследование. Биомед Рез Инт. 2014;2014:123156. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
49. Chew AC, Mehta JS, Tan DT. Глубокая послойная кератопластика после разрешения водянки при кератоконусе. Роговица. 2011;30:454–459. [PubMed] [Google Scholar]
50. Анвар Х.М., Анвар М. Предескеметическая диссекция при зажившей водянке — разумное использование воздуха и жидкости. Роговица. 2011; 30:1502–1509. [PubMed] [Google Scholar]
51. Тан Д.Т., Дарт Дж.К., Холланд Э.Дж., Киношита С. Трансплантация роговицы. Ланцет.
2012; 379:1749–1761. [PubMed] [Google Scholar]
52. Tan DT, Anshu A. Передняя пластинчатая кератопластика: «Назад в будущее» — обзор. Клин Эксперимент Офтальмол. 2010; 38: 118–127. [PubMed] [Академия Google]
53. Арчила Е.А. Глубокая пластинчатая кератопластика с рассечением тканей хозяина с интрастромальной инъекцией воздуха. Роговица. 1984–1985; 3: 217–218. [PubMed] [Google Scholar]
54. Панда А., Сингх Р. Методы интраламеллярной диссекции в послойной кератопластике. Роговица. 2000;19:22–25. [PubMed] [Google Scholar]
55. Tsubota K, Kaido M, Monden Y, Satake Y, Bissen-Miyajima H, Shimazaki J. Новая хирургическая техника глубокой пластинчатой кератопластики с однорядной коррекцией швов. Am J Офтальмол. 1998;126:1–8. [PubMed] [Google Scholar]
56. Manche EE, Holland GN, Maloney RK. Глубокая послойная кератопластика с использованием вязкоупругой диссекции. Арка Офтальмол. 1999; 117:1561–1565. [PubMed] [Google Scholar]
57. Melles GR, Remeijer L, Geerards AJ, Beekhuis WH.
Быстрая хирургическая техника глубокой передней послойной кератопластики с использованием вискозной диссекции. Роговица. 2000;19:427–432. [PubMed] [Google Scholar]
58. Бахар И., Кайзерман И., Сринивасан С., Я-Пинг Дж., Сломович А.Р., Рутман Д.С. Сравнение трех различных методов трансплантации роговицы при кератоконусе. Am J Офтальмол. 2008;146:905–912.e1. [PubMed] [Google Scholar]
59. MacIntyre R, Chow SP, Chan E, Poon A. Отдаленные результаты глубокой передней пластинчатой кератопластики по сравнению со сквозной кератопластикой у пациентов с австралийским кератоконусом. Роговица. 2014; 33:6–9. [PubMed] [Google Scholar]
60. Cano-Ortiz A, Villarrubia A. [Трансплантация роговицы при кератоконусе: сквозная кератопластика в сравнении с глубокой передней пластинчатой кератопластикой с использованием техники Меллеса] Arch Soc Esp Oftalmol. 2015;90:4–8. Испанский язык. [PubMed] [Академия Google]
61. Анвар М., Тейхманн К.Д. Техника больших пузырей для обнажения десцеметовой мембраны при передней послойной кератопластике.
J Катаракта рефракта Surg. 2002; 28: 398–403. [PubMed] [Google Scholar]
62. Аль-Торбак А.А., Аль-Мотова С., Аль-Ассири А., Аль-Хараши С., Аль-Шахван С., Аль-Мезаин Х. и др. Глубокая передняя послойная кератопластика при кератоконусе. Роговица. 2006; 25: 408–412. [PubMed] [Google Scholar]
63. Фогла Р., Падманабхан П. Результаты глубокой послойной кератопластики с использованием техники большого пузыря у пациентов с кератоконусом. Am J Офтальмол. 2006; 141: 254–259.. [PubMed] [Google Scholar]
64. Fontana L, Parente G, Tassinari G. Клинические результаты после глубокой передней послойной кератопластики с использованием техники большого пузыря у пациентов с кератоконусом. Am J Офтальмол. 2007; 143:117–124. [PubMed] [Google Scholar]
65. Feizi S, Javadi MA, Jamali H, Mirbabaee F. Глубокая передняя пластинчатая кератопластика у пациентов с кератоконусом: техника больших пузырей. Роговица. 2010;29:177–182. [PubMed] [Google Scholar]
66. Романо В., Иовиено А.
, Паренте Г., Солдани А.М., Фонтана Л. Отдаленные клинические результаты глубокой передней пластинчатой кератопластики у пациентов с кератоконусом. Am J Офтальмол. 2015;159: 505–511. [PubMed] [Google Scholar]
67. Khakshoor H, Eslampoor A, Rad SS, Vejdani A. Модифицированная глубокая передняя послойная кератопластика для лечения распространенного кератоконуса с крутой кривизной роговицы, чтобы помочь в устранении морщин в десцеметовой мембране. Индийский Дж. Офтальмол. 2014;62:392–395. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
68. Ghanem RC, Bogoni A, Ghanem VC. Интрастромальная инъекция воздуха («пахи-пузырь») под контролем пахиметрии для глубокой передней послойной кератопластики: результаты первых 110 случаев. Роговица. 2015; 34: 625–631. [PubMed] [Академия Google]
69. Яо Ю.Ф. Новая методика выполнения глубокой послойной кератопластики с полным ложем. Роговица. 2008; 27 (Приложение 1): S19–S24. [PubMed] [Google Scholar]
70. Дуа Х.С., Фарадж Л.
А., Саид Д.Г., Грей Т., Лоу Дж. Новое определение анатомии роговицы человека: новый преддесцеметов слой (слой Дуа) Офтальмология. 2013; 120:1778–1785. [PubMed] [Google Scholar]
71. Фарид М., Штайнерт РФ. Глубокая передняя послойная кератопластика, выполненная фемтолазерным зигзагообразным разрезом, для лечения патологии стромы роговицы и эктатической болезни. J Катаракта рефракта Surg. 2009 г.;35:809–813. [PubMed] [Google Scholar]
72. Buzzonetti L, Laborante A, Petrocelli G. Стандартизированная техника больших пузырьков в глубокой передней пластинчатой кератопластике с помощью фемтосекундного лазера. J Катаракта рефракта Surg. 2010; 36:1631–1636. [PubMed] [Google Scholar]
73. Buzzonetti L, Petrocelli G, Valente P. Фемтосекундный лазер и крупнопузырьковая глубокая передняя пластинчатая кератопластика: новый шанс. J Офтальмол. 2012;2012:264590. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
74. Tan DTH, Mehta JS. Будущие направления ламеллярной трансплантации роговицы.